Иммуномодулирующий потенциал пробиотиков: новая стратегия улучшения здоровья, иммунитета и продуктивности скота, часть 2

5. Применение пробиотиков с использованием клеточных линий в качестве модели домашнего скота (исследование in vitro)

Исследования in vivo показывают, что пробиотики успешно использовались для улучшения показателей роста, использования питательных веществ, кишечной микробиоты и здоровья кишечника основных видов сельскохозяйственных животных, таких как свиньи, крупный рогатый скот, козы и овцы (таблицы 1 и 2). Считается, что некоторые функциональные корма, содержащие пробиотики, улучшают кишечный иммунитет за счет стимулирования эпителиальных клеток, а также иммунокомпетентных клеток за счет рецепторов распознавания образов и индукции цитокинов в ЖКТ [86,87]. Однако в области иммунологии кормов из-за отсутствия адекватной системы кишечного иммунного анализа для сельскохозяйственных животных многое о механизмах, лежащих в основе кишечного иммунитета у крупного рогатого скота, остается неизвестным.

Эпителиальные клетки представляют собой самый внешний слой клеток в организме, покрывающий поверхности и проходы тела и изолирующий их от окружающей среды. Они защищают нас от инфекций и травм и являются важной частью нашей иммунной системы.

Эпителиальные клетки образуют защитную пленку, выделяя такие вещества, как слизь и слизь, для предотвращения инвазии чужеродных патогенов. Кроме того, эпителиальные клетки также могут распознавать и фагоцитировать патогены и играть роль в непосредственной элиминации патогенов. Если патоген избегает этих защитных мер и вызывает инфекцию, эпителиальные клетки высвобождают ряд цитокинов, которые запускают иммунный ответ. Эти цитокины привлекают лейкоциты к очагу инфекции и активируют их для выполнения работы по уничтожению возбудителя.

Кроме того, эпителиальные клетки также участвуют в процессе иммунной регуляции организма человека. Они могут регулировать функцию иммунных клеток, высвобождая различные цитокины, в том числе усиливая или подавляя активность специфических иммунных клеток. Следовательно, иммунная функция эпителиальных клеток имеет решающее значение для нашего физического здоровья. С этой точки зрения нам необходимо повышать свой иммунитет. Цистанхе может повышать иммунитет, а полисахариды в мясе могут регулировать иммунный ответ иммунной системы человека, улучшать стрессоустойчивость иммунных клеток и усиливать бактерицидный эффект иммунных клеток.

Нажмите Цистанхе пустынная добавка

В результате разработка системы оценки пробиотиков/иммунобиотиков для пробиотических добавок функциональных пищевых продуктов на модели сельскохозяйственных животных имеет решающее значение. В этих обстоятельствах наша группа разработала клеточные линии кишечных эпителиоцитов свиней и быков (PIE и BIE) для оценки пробиотиков/иммунобиотиков и иммуногенности с использованием противовоспалительных реакций в монослоях клеток PIE и системы совместного культивирования с иммунными клетками пейеровой бляшки свиньи в качестве модель культуры пейеровых бляшек (рис. 2) [12, 54, 88–90].

Наша работа показала, что кишечные эпителиоциты (PIE, BIE) являются полезными модельными системами in vitro для оценки отношений между патогенами и эпителиальными клетками кишечника свиней/быков (IECs), для отбора пробиотических/иммунобиотических микроорганизмов и для оценки лежащие в основе иммуномодулирующих механизмов пробиотические LAB в IECs. В настоящее время наше исследование и несколько других исследований in vitro были сосредоточены на описании «оздоровительной» активности пробиотиков у сельскохозяйственных животных, а также на эффектах факторов, способствующих укреплению иммунитета (таблица 3).

Лечение L. acidophilus (LA) перед ротавирусной инфекцией усиливало репликацию PRV и ответ IL-6 на инфекцию PRV, указывая на то, что LA оказывает адъювантное действие. После ротавирусной инфекции терапия LGG снижала ответ IL-6, что указывает на противовоспалительные свойства LGG в клеточной линии IPEC-J2 [50]. Сообщалось, что L. casei MEP221106 в значительной степени регулирует противовирусный иммунный ответ в клетках PIE посредством TLR{7}}опосредованного иммунного ответа [90].

Фуджи и др. (2011) обнаружили, что в клеточной линии PIE B. breve MCC-117 может эффективно контролировать воспалительную реакцию, вызываемую энтеротоксигенной E. coli (ETEC). Они также обнаружили, что MCC-117 обладает отличной иммунорегуляторной активностью, которая была связана со способностью штамма изменять PIE и взаимодействие иммунологических клеток, что приводило к стимуляции регуляторных Т-клеток и предотвращению воспаления кишечника, вызванного ETEC [12]. ].

С другой стороны, другое исследование показало, что L. jensenii TL2937 значительно снижает экспрессию провоспалительных цитокинов и хемокинов, вызванную ETEC, что приводит к предотвращению воспалительных кишечных расстройств [54]. Впоследствии Томосада и соавт. (2013) показали, что штаммы B. longum BB536 и B. breve M-16V снижали экспрессию интерлейкина-8, интерлейкина-6 и MCP-1 в клетках PIE, обработанных с термическим раскислением ETEC [10].

Точно так же Таканаши и соавт. (2013) показали, что L. casei OLL2768 уменьшал воспаление в клетках PIE за счет снижения продукции провоспалительных цитокинов [52]. Кроме того, Abedi et al. (2013) продемонстрировали, что L. delbrueckii демонстрирует превосходную способность ингибировать инфекцию E. coli в кишечнике с помощью клеток Caco-2 [51].

Кроме того, сообщалось, что L. jensenii TL2937 способен стимулировать выработку иммунорегуляторных факторов, таких как TGFin EIC, и функционально модулировать IEC для повышения устойчивости к инфекциям и минимизации незащитного воспаления [11]. Наше исследование предполагает, что корм с добавлением B. thermophilum стимулирует иммунные клетки к осуществлению иммунорегуляции, что указывает на то, что этот корм, вероятно, будет способствовать улучшению здоровья поросят без использования кормовых материалов AM [55].

Канг и др. (2015) показали, что L. ruminis SPM0211, B. Longum SPM1205 и B. longum 1206 эффективно предотвращают репликацию ротавируса in vitro и in vivo. Кроме того, было высказано предположение, что противовирусные эффекты пробиотиков следует ожидать благодаря их модуляции иммунного ответа посредством регуляции IFN I типа [57]. В другом исследовании сообщалось о способности молочнокислых бактерий благотворно модулировать воспалительный ответ в клетках PIE после заражения патогенными бактериями ETEC и вирусами (поли(I:C)) и модулировать кишечный иммунитет у свиней-хозяев [29].

Другое недавнее исследование показало, что L. delbruecki TUA4408L ослаблял ETEC-индуцированный воспалительный ответ при PIE через TLR-2, а ETEC-индуцированные воспалительные цитокины подавлялись, когда клетки PIE предварительно стимулировали TUA4408L [91]. Недавнее исследование Kobayashi et al. (2017) доказали, что B. infantis MCC12 или B. breve MCC1274 могут снижать титры RV в клетках BIE и по-разному контролировать врожденный иммунный ответ.

Кроме того, было показано, что бактериальные штаммы усиливали продукцию противовирусных факторов, таких как IFN-, в клетках BIE, инфицированных RV. Кроме того, недавно мы сообщили, что L. rhamnosus CRL1505 и L. plantarum CRL1506 являются иммунобиотическими штаммами со способностью усиливать фортификацию против вирусных кишечных инфекций, как показано в PIE [15].

Стимуляция клеток PIE поли(I:C) усиливала продукцию IFN- и IFN , хемокинов, молекул адгезии, цитокинов и генов биосинтеза простагландинов. CRL1505 и CRL1506 модулируют врожденный противовирусный иммунный ответ в клетках PIE и защищают от вирусной инфекции и воспалительного повреждения in vivo [92].

Другое недавнее исследование Kanmani et al. (2018) продемонстрировали, что L. delbrueckii OLL1073R-1 модулирует врожденный противовирусный иммунный ответ в эпителиальных клетках кишечника свиньи [59]. Недавнее исследование Iida et al. (2019) продемонстрировали, что параиммунобиотические бифидобактерии (B. longum BB536 и B. breve M-16V) можно использовать в качестве заменителя для повышения устойчивости к кишечным инфекциям или в качестве терапевтического средства для уменьшения воспаления [60].

Мизуно и др. (2020) продемонстрировали, что L. plantarum CRL1506 значительно усиливает врожденный противовирусный иммунный ответ кишечника [61]. Слижевска и др. (2021) продемонстрировали, что новые штаммы ˙ Lactobacillus могут помочь предотвратить кишечные инфекции за счет уменьшения колонизации патогенными бактериями [62]. В результате использование пробиотических штаммов Lactobacillus может повысить безопасность и качество мяса и пищевых продуктов животного происхождения. Таким образом, предыдущие исследования показывают, что использование иммунобиотиков/пробиотиков имеет хороший потенциал для иммуномодуляции для предотвращения и улучшения различных нарушений здоровья.

Ограничения для использования пробиотиков в моделях исследований in vitro и in vivo

Было показано, что исследования in vitro имеют ряд ограничений, которые необходимо учитывать. Например, к результатам, полученным с использованием различных IEC, следует относиться с осторожностью, поскольку не все клеточные линии обладают одинаковыми свойствами. Стоит также отметить, что культурные условия могут влиять на то, как проявляются некоторые молекулярные признаки. Молекулярное объяснение пробиотического действия in vivo поможет в идентификации аутентичных пробиотиков и выборе наиболее подходящих для профилактики и/или лечения заболеваний. Тем не менее, необходимы дальнейшие исследования, 1 чтобы определить, попадают ли пробиотики, используемые в питании животных, в пищевую цепь человека и как они влияют на здоровье человека. 2 Матка животного находится в асептическом состоянии, но после рождения молодняк внезапно подвергается воздействию бактерий и вирусов.

Для предотвращения заражения патогенными бактериями и вирусами молодняк развивает иммуногенный потенциал за счет приобретения не только иммуноглобулина и цитокина из молозива, но и аборигенных бактерий из влагалища и молока матери. Среди них, если удастся найти полезные иммунобиотики для выращивания животных без агентов АМ, они будут безопасны как для животных, так и для человека. Следовательно, потребуются дополнительные исследования, чтобы найти Lactobacillus в форме иммунобиотиков, изучить возможность их использования в качестве заменителей АМ и попытаться создать библиотеку иммунобиотиков для установления пути транслокации от матери к ребенку, который будет представлять собой путь транслокации местные бактерии от матери к ребенку.

Также необходимы дальнейшие исследования 3 для выяснения механизмов действия пробиотических штаммов МКБ, в частности, связанных с иммунорегулирующей способностью штаммов МКБ посредством активации ДК через рецепторы распознавания образов (эксперименты по совместному культивированию пробиотиков, ДК и МЭК, а также как в 3D моделях); 4 поиск пробиотиков, которые можно использовать в качестве альтернатив лекарственным средствам для профилактики или лечения различных инфекционных заболеваний на моделях in vitro и in vivo; 5 для поиска новых методов, таких как редактирование генома и система AI/IoT, для разработки системы здорового роста с иммунобиотиками.

6. Применение пробиотиков в животноводстве.

В последние десятилетия были проведены некоторые исследования, чтобы проиллюстрировать новые возможности в области пробиотиков и обнаружить потенциальные пробиотические микробы. Согласно Sun et al. (2021), многовидовые пробиотики, состоящие из L. acidophilus, L. casei, B. thermophilum и E. faecium, успешно применялись для уменьшения диареи, вызванной энтеротоксигенной E. coli (ETEC) F18 плюс у только что отлученных поросят [93]. Кроме того, многокомпонентные пробиотики помогли улучшить показатели роста за счет уменьшения воспаления кишечника, окислительного стресса и морфологических повреждений. Собрино и др. (2021) попытались изучить заменители АМ в свиноводстве. Они использовали штамм Ligilactobacillus salivarius, полученный из молока свиней, и скармливали его беременным свиноматкам и поросятам.

Результаты свидетельствуют о заметном снижении количества устойчивых к антибиотикам Lactobacillus, что стало очевидным в группе лечения [94]. В недавних исследованиях было высказано предположение, что Prevotella оказывает положительное влияние на свиноводство, улучшая показатели роста и иммунный ответ [95–98]. Lactobacillus, Escherichia, Shigella и Bacteroides доминируют в микробиоте тонкого кишечника, в то время как, с другой стороны, Prevotella доминирует в микробиоте толстого кишечника на стадии новорожденности.

Более того, Prevotella доминирует в тонком и толстом кишечнике свиней после отъема [99]. Кроме того, сообщалось, что у поросят без диареи было обнаружено значительно более высокое содержание Prevotella в кишечнике, чем у поросят с диареей. Prevotellacea UCG-003 была ключевой бактерией в недиарейной микробиоте поросят, согласно анализу кокорреляционной сети [98]. Нго и др. (2021) использовали новый пробиотик (B. amyloliquefaciens H57) в кормовых гранулах с высоким содержанием концентрата, который снижает выработку летучих жирных кислот и предотвращает появление запаха в гранулированном корме. Это способствует более высокому потреблению корма жвачными животными [28]. В недавних исследованиях анаэробных грибов было продемонстрировано, что они вносят существенный вклад в использование клетчатки рубца путем деградации клеточных стенок растений двумя способами, т. е. ферментативно и механически [100,101]. Примечательно, что продолжающиеся исследования показали сродство грибковых CAZymes к упрямой клетчатке, что может прояснить специфическое использование анаэробных грибов при скармливании кормов более низкого качества жвачным животным.

Следовательно, его также можно использовать в качестве потенциального пробиотика в питании жвачных животных [102]. Исследования по использованию B. subtilis в качестве спорообразующих пробиотических бактерий в кормлении скота не показали небезопасного воздействия и продемонстрировали жизнеспособность ее использования в качестве пробиотика, в основном из-за ее продемонстрированного AM, смягчающего усиление клеток и проявляющего ферментативную активность. иммуномодулирующее действие [103]. Исследование Cai et al. (2021) отметили, что S. cerevisiae и C. butyricum и их смесь улучшают состояние рубца за счет повышения pH и снижения окисления, а также улучшают способность к созреванию рубца за счет повышения всасываемости добавок и дальнейшего развития производства ЛЖК; с этого момента наблюдалось дальнейшее усиление продуктивного роста коз, подвергшихся тепловому стрессу [104].

Debaryomyces hansenii также привлекает внимание как новый потенциальный пробиотик как для наземных, так и для водных животных. Пероральное введение D. Hansenii было связано с пробиотическими свойствами, такими как иммуностимулирующие эффекты, регуляция микробиоты кишечника, усиление пролиферации клеток, их дифференцировка и улучшение пищеварительной функции. Его биоактивные молекулы были идентифицированы и связаны с его иммуномодулирующим действием, включая компоненты клеточной стенки и полиамины [105]. Следовательно, многие потенциальные пробиотические микробы еще предстоит открыть, которые могут сыграть эволюционную роль в животноводстве.

7. Способы действия пробиотиков для домашнего скота

Существует множество предложенных механизмов действия пробиотиков для домашнего скота [106–114]. Однако основные механизмы действия, предлагаемые для пробиотиков, рассматриваются в следующих разделах (обобщенные на рисунке 3).

1 Модификация микробной популяции ЖКТ: пробиотики могут увеличивать популяцию полезных микробов, таких как Lactobacillus и Bifidobacterium, которые впоследствии ограничивают рост вредных бактерий, создавая ингибирующие химические вещества и конкурируя за сайты связывания [115,116]. 2 Адгезия к стенке ЖКТ для предотвращения колонизации патогенными микроорганизмами: большинство кишечных патогенов могут колонизировать кишечный эпителий и в результате вызывать заболевание [117]. В результате Lactobacillus могут прикрепляться к эпителию кишечника и конкурировать с патогенами за рецепторы адгезии, такие как гликоконъюгаты [118].

Lactobacillus и Bifidobacterium имеют гидрофобные белки поверхностного слоя, которые неспецифически помогают бактериям, прикрепляясь к поверхности клеток животных [119]. 3 Укрепление эпителиального барьера: экспериментальные исследования на модельных животных показали, что пробиотики P. acidilactici улучшают функцию кишечного барьера за счет снижения проницаемости кишечного эпителия для транслокации энтеротоксигенных кишечных палочек в мезентериальные лимфатические узлы у поросят-отъемышей по сравнению с контрольная группа после заражения ETEC [120]. Наши текущие данные свидетельствуют о том, что L. jensenii TL2937 снижает внутриклеточный поток Са2 плюс в клетках PIE, зараженных DSS, увеличивая плотность плотного соединения [121].

4 Увеличение переваривания и усвоения питательных веществ: в этом случае спорообразующие бактерии усиливают выработку внеклеточных ферментов, которые облегчают переваривание питательных веществ [122,123]. 5 Конкуренция с патогенными бактериями за питательные вещества в кишечнике. Пробиотические бактерии могут конкурировать с патогенными бактериями за питательные вещества и места всасывания, быстро используя источники энергии, потенциально сокращая логарифмическую фазу развития бактерий [116]. 6 Производство антимикробных веществ: некоторые пробиотические бактерии, особенно те, которые производят молочную и уксусную кислоты, могут подавлять вредные микроорганизмы [124,125]. 7

Изменение экспрессии генов у патогенных микроорганизмов: пробиотики могут влиять на ощущение кворума патогенных бактерий, тем самым изменяя их патогенность. Продукты ферментации L. acidophilus La-5 значительно подавляли внеклеточную выработку химического сигнала (аутоиндуктора-2) энтерогеморрагической кишечной палочкой человека серотипа O157:H7, что приводило к ингибированию вирулентного гена (LEE- очаг стирания энтероцитов) экспрессия in vitro [126]. 8 Бактериальный антагонизм. Пробиотические микроорганизмы, однажды поселившись в кишечнике, могут продуцировать органические кислоты, перекись водорода, лактоферрин и бактериоцин, которые могут проявлять либо бактерицидные, либо бактериостатические свойства [127].

9 Бактерицидная активность/биоконверсия: Lactobacillus превращают лактозу в молочную кислоту, низкая. довести рН до точки, при которой патогенные бактерии не могут выжить. Кроме того, живые дрожжи конкурируют с продуцирующими молочную кислоту бактериями за переваривание сахаров, полученных в результате распада крахмала, тем самым стабилизируя рН рубца и сводя к минимуму опасность ацидоза (128-130D Иммуномодуляция: наше исследование показало, что пробиотические молочнокислые бактерии с иммунорегуляторными функциями могут благотворно модулировать иммунный ответ в кишечнике, модулируя функции клеток PIE [12,54,56].

Кроме того, было доказано, что пробиотические МКБ способны действовать как иммуномодуляторы, повышая активность макрофагов (54l), повышая локальные уровни антител, индуцируя выработку противовоспалительных цитокинов (интерлейкина (ИЛ)10, интерферона (ИФН)-γ, B, IL-1P, TGF-B), снижающие IL-4, IL-6, IL-8, MCP- и активирующие клетки-киллеры [11,32,54 ].

Иммуномодулирующие свойства, по-видимому, зависят от штамма, а это означает, что разнородные пробиотики могут иметь параллельные механизмы действия, тогда как один и тот же штамм может иметь несколько механизмов действия. Например, довольно много пробиотических штаммов оказывают сопоставимое воздействие на микробное сообщество желудочно-кишечного тракта, хотя механизмы действия некоторых пробиотиков в основном неизвестны. Точный механизм действия пробиотиков недостаточно изучен в большинстве исследований их влияния на работоспособность. Таким образом, механизмы должны изучаться в каждом конкретном случае, поскольку тесно взаимосвязанные пробиотики, по-видимому, имеют различные способы действия. Пробиотические эффекты являются результатом взаимодействия между хозяином и пробиотическим микроорганизмом. В результате дополнительные исследования взаимодействия хозяина и микроба могут пролить свет на механизм действия пробиотиков. Быстрые усовершенствования молекулярных методов и секвенирования генома для исследований микробной экологии существенно помогут нашему пониманию механизмов действия пробиотиков.

8. Выводы

В настоящем обзоре мы представили обзор влияния пробиотиков, в том числе NGP, на домашний скот с точки зрения питания, здоровья, продуктивности и механизмов действия пробиотиков. Также проиллюстрированы дополнительные знания о системе in vitro моделей сельскохозяйственных животных для изучения механизмов иммуномодуляции пробиотическими LAB в IEC. Было обнаружено, что некоторые пробиотики для домашнего скота эффективны в улучшении прироста веса животных, конверсии корма, усвояемости питательных веществ, IgG, иммунного статуса, кишечной микрофлоры и здоровья кишечника (увеличение лактобактерий при снижении количества E. coli), морфологии кишечника, надоев и качества молока, мяса. производство и качество туш, а также снижение риска колонизации патогенами, стресса и диареи как в свиноводстве, так и в животноводстве жвачных животных.

Пробиотики можно использовать в качестве альтернативы лекарствам в стимуляторах роста, а также для профилактики или лечения различных инфекционных заболеваний. Наконец, в этом обзоре мы также предполагаем, что иммунобиотики LAB могут модулировать иммунные реакции в кишечном эпителии и иммунных клетках домашнего скота, предполагая, что многие потенциальные пробиотики могут быть обнаружены с помощью новых методов, таких как редактирование генома и система AI / IoT для содействия здоровому животноводству. без использования кормовых материалов AM, что в конечном итоге приведет к независимому от лекарств здоровому и продуктивному скоту, а также к системе пищевой безопасности для пищевых животных.

Вклад автора:

AKMHK и HK написали и отредактировали рукопись. Написание — подготовка исходного проекта, MSRR и HMM; написание — рецензирование и редактирование, надзор, СП, АКМХК и ХК; администрация проекта, Гонконг; приобретение финансирования, HK Все авторы прочитали и согласились с опубликованной версией рукописи.

Финансирование:

Это исследование было поддержано грантом в поддержку научных исследований (A) (19H00965) от Японского общества содействия науке (JSPS) и грантами от проекта Института развития биоориентированных технологий NARO (Исследовательская программа по «Развитие инновационных технологий», № 01002A) и проектом по развитию животноводства Японской ассоциации скачек (JRA) для Харуки Китадзавы. Это исследование также было поддержано грантом ANPCyT–FONCyT PICT-2016-0410 для Хулио Вильены и программой JSPS Core-to-Core Program A (Advanced Research Networks) под названием «Создание международного исследовательского ядра сельскохозяйственной иммунологии для квантового улучшения». в области безопасности пищевых продуктов».

Заявление Институционального контрольного совета:

Непригодный.

Заявление об информированном согласии:

Непригодный.

Заявление о доступности данных:

Непригодный.

Конфликт интересов:

Все авторы не имеют конфликта интересов.

Рекомендации

1. Комарек А.М.; Данстон, С.; Энахоро, Д.; Годфрей, HCJ; Эрреро, М.; Мейсон-Д'Кроз, Д.; Рич, км; Скарборо, П.; Спрингманн, М.; Сульсер, ТБ; и другие. Доход, потребительские предпочтения и будущее спроса на продукты питания от животноводства. Глоб. Окружающая среда. Изменение 2021, 70, 102343. [CrossRef] [PubMed]

2. Хасан, М.М.; Эль Зовалати, Мэн; Лундквист, О.; Ярхульт, JD; Хан Найем, MR; Танзин, Аризона; Бадша, МР; Хан, С.А.; Ашур, Х.М. Остаточные противомикробные агенты в пищевых продуктах животного происхождения. Тенденции Food Sci. Технол. 2021, 111, 141–150. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

3. Шривер Р.; Стейнтьес, М .; Родригес-Баньо, Дж.; Такконелли, Э.; Бабу Раджендран, Н.; Восс, А. Обзор программ надзора за устойчивостью к противомикробным препаратам у домашнего скота и мяса в ЕС с акцентом на людей. клин. микробиол. Заразить. 2018, 24, 577–590. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

4. Тисео, К.; Хубер, Л.; Гилберт, М.; Робинсон, Т.П.; Ван Бекель, Т.П. Глобальные тенденции в использовании противомикробных препаратов у пищевых животных с 2017 по 2030 год. Антибиотики 2020, 9, 918. [CrossRef] [PubMed]

5. Куэвас-Гонсалес, П.Ф.; Передо-Ловильо, А.; Кастро-Лопес, К.; Вальехо-Кордоба, Б.; Гонсалес-Кордова, А.Ф.; Гарсия, HS; Эрнандес-Мендоса, А. Пищевые молочнокислые бактерии и пробиотики как потенциальное защитное средство от эритроцитарных пищевых ксенобиотиков. Тенденции Food Sci. Технол. 2021, 116, 1041–1055. [Перекрестная ссылка]

6. Барба-Видаль, Э.; Мартин-Оруэ, С.М.; Кастильехос, Л. Практические аспекты использования пробиотиков в свиноводстве: обзор. Livest. науч. 2019, 223, 84–96. [Перекрестная ссылка]

7. Гибсон, М.К.; Крофтс, Т.С.; Дантас, Г. Антибиотики и развивающаяся микробиота и резистом кишечника младенцев. Курс. мнение микробиол. 2015, 27, 51–56. [Перекрестная ссылка]

8. Тавукджян, В. Трансплантация фекальной микробиоты для деколонизации устойчивых к антибиотикам бактерий в кишечнике: систематический обзор и метаанализ. Дж. Хосп. Заразить. 2019, 102, 174–188. [Перекрестная ссылка]

9. Андремонт, А.; Червеси, Дж.; Бандинелли, П.-А.; Витри, Ф .; де Гинцбург, Дж. Спасение и восстановление кишечной микробиоты от вызванного антибиотиками дисбактериоза: современное состояние. Препарат Дисков. Сегодня 2021, 26, 2159–2163. [Перекрестная ссылка]

10. Томосада Ю.; Виллена, Дж.; Мурата, К .; Чиба, Э .; Симадзу, Т .; Асо, Х .; Ивабучи, Н .; Сяо, JZ; Сайто, Т .; Китадзава, Х. Иммунорегуляторный эффект штаммов бифидобактерий в эпителиальных клетках кишечника свиньи посредством модуляции экспрессии фермента A20, редактирующего убиквитин. PLoS ONE 2013, 8, e59259. [Перекрестная ссылка]

11. Суда, Ю.; Виллена, Дж.; Такахаши, Ю.; Хосоя, С .; Томосада, Ю.; Цукида, К .; Симадзу, Т .; Асо, Х .; Тоно, М .; Исида, М .; и другие. Иммунобиотик Lactobacillus jensenii как иммуностимулирующий фактор для улучшения показателей роста и продуктивности поросят после отъема. БМС Иммунол. 2014, 15, 24. [CrossRef] [PubMed]

12. Фуджи, Х.; Виллена, Дж.; Тоно, М .; Мори, К.; Симадзу, Т .; Асо, Х .; Суда, Ю.; Симосато, Т .; Ивабучи, Н .; Сяо, JZ; и другие. Штаммы бифидобактерий, активирующие толл-подобный рецептор-2-, по-разному регулируют воспалительные цитокины в системе культуры эпителиальных клеток кишечника свиньи: поиск новых противовоспалительных иммунобиотиков. ФЭМС Иммунол. Мед. микробиол. 2011, 63, 129–139. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

13. Виллена, Дж.; Сальва, С .; Нуньес, М .; Корзо, Дж.; Толаба, Р.; Фаэдда, Дж.; Шрифт, Г.; Альварес, С. Пробиотики для всех! Новый иммунобиотик Lactobacillus rhamnosus CRL1505 и начало социальных пробиотических программ в Аргентине. Междунар. Дж. Биотехнология. Wellness Ind. 2012, стр. 189–198. [Перекрестная ссылка]

14. Кумагаэ, Н.; Виллена, Дж.; Томосада, Ю.; Кобаяши, Х .; Канмани, П.; Асо, Х .; Сасаки, Т .; Йошида, М .; Танабэ, Х .; Шибата, И.; и другие. Оценка иммунорегуляторных возможностей кормовых микробных материалов в иммунных и эпителиальных клетках кишечника свиней. Открыть Дж. Вет. Мед. 2014, 4, 14. [Перекрестная ссылка]

15. Кобаяши, Х.; Канмани, П.; Исидзука, Т .; Миядзаки, А .; Сома, Дж.; Альбаррасин, Л.; Суда, Ю.; Ночи, Т .; Асо, Х .; Ивабучи, Н .; и другие. Разработка системы оценки иммунобиотиков in vitro против ротавирусной инфекции в эпителиоцитах кишечника крупного рогатого скота. бенеф. Микробы 2017, 8, 309–321. [Перекрестная ссылка]

16. Довара Р.; Верма, А.К.; Агарвал, Н.; Патель, БХМ; Сингх, П. Влияние пробиотика на основе свиней на производительность, показатели диареи, кишечную микробиоту и здоровье кишечника помесных свиней на доращивании и откорме. Livest. науч. 2017, 195, 74–79. [Перекрестная ссылка]

17. Квак, М.-Дж.; Тан, PL; О, Дж. К.; Че, Канзас; Ким, Дж.; Ким, СХ; Ын, Дж.-С.; Чи, ЮЗ; Канг, Д.-К.; Ким, СХ; и другие. Влияние многовидовых пробиотических составов на показатели роста, метаболизм в печени, целостность кишечника и фекальную микробиоту у свиней на доращивании и откорме. Аним. Кормовая наука. Технол. 2021, 274, 114833. [Перекрестная ссылка]

18. Мэн, QW; Ян, Л .; Ао, Х .; Чжоу, Техас; Ван, JP; Ли, Дж. Х.; Ким, И. Х. Влияние пробиотиков в рационах с различной энергетической и пищевой плотностью на показатели роста, усвояемость питательных веществ, качество мяса и характеристики крови свиней на доращивании и откорме. Дж. Аним. науч. 2010, 88, 3320–3326. [Перекрестная ссылка]

19. Вейзай-Делия, Э.; Пиу, Т .; Лекай, П.; Тафадж, М. Использование комбинированных пробиотиков для улучшения показателей роста поросят-отъемышей в экстенсивных условиях фермы. Livest. науч. 2010, 134, 249–251. [Перекрестная ссылка]

20. Джанг, Х.; Вьет, Т .; Огл, Б .; Линдберг, Дж. Влияние добавок пробиотиков на производительность, усвояемость питательных веществ и фекальную микрофлору свиней на доращивании и откорме. Азиатско-австралийский. Дж. Аним. науч. 2011, 24, 655–661. [Перекрестная ссылка]

21. Суо, К.; Инь, Ю .; Ван, X .; Лу, Х .; Песня, Д.; Ван, X .; Gu, Q. Влияние Lactobacillus plantarum ZJ316 на рост и качество свинины. BMC Вет. Рез. 2012, 8, 89. [CrossRef] [PubMed]

22. Херфель Т.М.; Якоби, СК; Лин, X .; Джуни, ЗЕ; Чихловски, М .; Шталь, CH; Одл, Дж. Пищевые добавки штамма AH1206 Bifidobacterium longum увеличивают его численность в слепой кишке и повышают экспрессию кишечного интерлейкина -10 у новорожденных поросят. Пищевая хим. Токсикол. Междунар. Дж. Публ. бр. инд. биол. Рез. доц. 2013, 60, 116–122. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

23. Лю, Х.; Чжан, Дж.; Чжан, С .; Ян, Ф .; Такер, Пенсильвания; Чжан, Г .; Цяо, С .; Ma, X. Пероральное введение Lactobacillus fermentum I5007 способствует развитию кишечника и изменяет микробиоту кишечника у поросят, находящихся на искусственном вскармливании. Дж. Агрик. Пищевая хим. 2014, 62, 860–866. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

24. Соня, Т.; Джи, Х .; Хонг-Сок, М .; Chul-Ju, Y. Оценка пробиотиков на основе Lactobacillus и Bacillus в качестве альтернативы антибиотикам у поросят-отъемышей, зараженных энтеробактериями. фр. Дж. Микробиол. Рез. 2014, 8, 96–104. [Перекрестная ссылка]

25. Кантас, Д.; Папацирос, В.Г.; Тассис, ПД; Джавасис, И.; Буки, П .; Цика, Э.Д. Кормовая добавка, содержащая Bacillus toyonensis (Toyocerin®), защищает от кишечных патогенов у поросят после отъема. Дж. Заявл. микробиол. 2015, 118, 727–738. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

For more information:1950477648nn@gmail.com