Применение кверцетина для обыкновенного карпа (Cyprinus Carpio): I. Влияние на показатели роста, гуморальный иммунитет, антиоксидантный статус, гены, связанные с иммунитетом, и устойчивость к тепловому стрессу

Это исследование было проведено для оценки влияния различных уровней кверцетина на показатели роста, иммунные реакции, антиоксидантный статус, биохимические факторы сыворотки и реакцию на высокотемпературный стресс у обыкновенного карпа (Cyprinus carpio). В общей сложности 216 карпов со средним весом 27:21 ± 53 г были разделены на 12 аквариумов (четыре обработки × три повторения) и скармливались 0 мг/кг кверцетина (T0), 200 мг/кг кверцетина (T1), 400 мг/кг кверцетина (T2) и 600 мг/кг кверцетина (T3) в течение 60 дней. Существовали значительные различия в показателях роста, и самая высокая конечная живая масса (FBW), привес (WG), удельная скорость роста (SGR) и потребление корма (FI) наблюдались в T2 и T3 (P <0:05). .

Существует тесная связь между биохимическими факторами сыворотки и иммунитетом. Сывороточные биохимические факторы являются основными метаболитами в организме человека, и повышение или понижение их уровня будет влиять на иммунитет организма человека.

К сывороточным биохимическим факторам относятся белки, углеводы, жиры и другие вещества, образующие сложную метаболическую сеть в организме человека. Когда организм человека находится в здоровом состоянии, уровни биохимических факторов сыворотки будут находиться в сбалансированном состоянии, что способствует поддержанию здорового состояния организма человека.

Когда организм человека страдает от болезни или стресса, уровни сывороточных биохимических факторов будут меняться, что приведет к снижению иммунитета. Например, при снижении уровня белка и амилазы в сыворотке иммунитет организма будет значительно ослаблен, что приведет к повышенной восприимчивости к заболеваниям.

Поэтому очень важно поддерживать баланс биохимических факторов сыворотки крови, чего можно добиться изменением образа жизни. Например, больше физических упражнений, употребление меньшего количества продуктов с высоким содержанием жиров, соли и сахара, а также употребление большего количества свежих фруктов и овощей могут помочь организму поддерживать здоровый уровень биохимических факторов в сыворотке крови, тем самым улучшая иммунитет.

Короче говоря, биохимические факторы сыворотки тесно связаны с иммунитетом человека, и вместе они составляют метаболическую сеть организма. Мы должны вести здоровый образ жизни и поддерживать баланс биохимических факторов сыворотки, чтобы защитить наше здоровье. С этой точки зрения нам необходимо повышать свой иммунитет. Цистанхе может значительно повысить иммунитет, потому что Цистанхе также обладает антивирусным и противораковым действием, что может усилить способность иммунной системы бороться и повысить иммунитет организма.

cistanche uk

Нажмите Польза цистанхе для здоровья

Различные уровни кверцетина значительно увеличивали активность пути комплемента (ACH50) и активность лизоцима как до, так и после теплового стресса (P < 0:05). Каталаза (CAT), глутатионпероксидаза (GPx) и малоновый диальдегид (MDA) были значительно повышены у рыб, подвергшихся тепловому стрессу, но рыбы, получавшие корм с добавками кверцетина, показали самые низкие уровни как до, так и после теплового стресса (P < {{ 7}}:05). Уровни супероксиддисмутазы (СОД) были значительно повышены в кормах для рыб с добавлением кверцетина в обе фазы (P < 0:05). Различные уровни кверцетина привели к значительному снижению активности аланинаминотрансферазы (АЛТ) и аспартатаминотрансферазы (АСТ) до и после пробного теста (P <0:05).

Уровни глюкозы и кортизола были значительно выше в контрольной группе по сравнению с другими группами лечения на обеих фазах (P < {{0}}:05). Экспрессия глутатионпероксидазы (GPx) и лизоцима заметно повышалась у рыб, получавших корм с добавлением кверцетина (P <0:05). Для гормона роста (GR) и интерлейкина -8 (IL8) не наблюдалось заметных эффектов (P > 0:05). В заключение, диетические добавки кверцетина (400- 600 мг/кг кверцетина) улучшили показатели роста, иммунитет и антиоксидантный статус, а также повысили устойчивость к тепловому стрессу.

1. Введение

Аквакультура постепенно развивается параллельно с ростом населения планеты. Тем не менее, интенсивная производственная деятельность, резкие перепады температур, аномальный климат и другие условия окружающей среды как таковые вызывают у рыб стресс и ухудшают качество продукции и выход, вызывая угнетение иммунитета и усиление инфекционных эпидемий. Одним из наиболее важных факторов окружающей среды в аквакультуре является температура, поскольку она может влиять на метаболизм, пищевое поведение, показатели роста, выживаемость и устойчивость к болезням водных животных [1–3]. Температурные изменения снижали рост, эффективность питания, физиологические функции, иммунный ответ и окислительный статус в органах водных животных ([3–5].

Для борьбы с такими проблемами включение в рацион рыб функциональных кормовых добавок является экологически безопасным и эффективным. Эти добавки потенциально могут повысить рост и репродуктивную способность рыбы, качество филе, устойчивость к болезням и условиям окружающей среды.

Полифенолы и добавки, богатые полифенолами, добавляют в корма для водных животных для повышения показателей роста, иммунного ответа, антиоксидантного статуса и устойчивости к болезням [6, 7]. Считающийся основным классом флавоноидов (флавонолов), семейства полифенольных соединений, кверцетин содержится в изобилии во многих фруктах и овощах, включая чай, лук, яблоки, клубнику, капусту, орехи и цветную капусту.

Широко признано, что кверцетин ингибирует образование биопленки многими патогенными бактериями, такими как Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, Streptococcus mutants, Escherichia coli и Pseudomonas aeruginosa, с такими его свойствами, как подавление кворум-сенсорных путей, ингибирование эффлюксных насосов, нарушение или изменение плазматической мембраны и блокирование синтеза нуклеиновых кислот [8]. Кроме того, кверцетин обладает многими полезными свойствами, такими как противораковое [9], антиоксидантное и противовоспалительное [10].

Предыдущие результаты показали, что диетический кверцетин оказывает положительное влияние на антиоксидантный статус [11, 12], показатели роста [13, 14], качество мяса [15], гематологические и иммунные параметры [16], устойчивость к болезням [17, 18], защитные свойства иридовируса групера [19–21]. Некоторые исследования показали, что диетический кверцетин улучшал показатели роста цыплят [22] и улучшал органолептические показатели, такие как цвет, текстура и общая приемлемость козьей корейки [23]. У водных животных кверцетин в дозе выше 400 мг/кг улучшал показатели роста тиляпии (виды Oreochromis) [24].

Предыдущие исследования показали, что пищевые травяные добавки снижают маркеры стресса у некоторых видов рыб и/или моллюсков, таких как Macrobrachium rosenbergii [25], Megalobrama amblycephala [26] и Oncorhynchus mykiss [27], подвергающихся воздействию высоких температур. Однако нет информации о влиянии диетического кверцетина на водных животных, подвергающихся высокотемпературному стрессу. Поэтому настоящее исследование было проведено для сравнения влияния пищевых добавок кверцетина на показатели роста, некоторые иммунные параметры, антиоксидантный статус, некоторые биохимические показатели сыворотки и реакцию рыб на стресс при высокой температуре.

cistanche effects

2. Материал и методы.

2.1. Experimental Diets. Four experimental diets with different quercetin (>Были сформулированы уровни чистоты 95 процентов, Sigma Chemical Co., США (таблица 1). Вкратце, сухие ингредиенты тщательно перемешивали. После диффузии жидких ингредиентов в смесь добавляли деионизированную воду (250 мл на кг корма). Приготовленную смесь экструдировали на электрической мясорубке (MG1400R, Pars Khazar, Тегеран, Иран) и корма подавались в зависимости от размера рта рыбы (диаметр 1 мм). Наконец, были приготовлены четыре экспериментальных рациона, включающие 0 мг/кг кверцетина (Т0), 200 мг/кг кверцетина (Т1), 400 мг/кг кверцетина (Т2) и 600 мг/кг кверцетина (Т3). Гранулы сушили в сушильном шкафу и затем хранили при 4°С до использования. Химический состав, влажность, сырой протеин, липиды и зольность подтверждали стандартными методами [28].

2.2. Рыба и экспериментальные условия. В общей сложности 216 обыкновенных карпов со средней массой 27:21 ± 53 г были получены из частного рыбоводного хозяйства и перемещены в исследовательский зал Гонбадского университета (Гонбад, Иран). Их содержали в 12 аквариумах с плотностью 18 рыб на аквариум и акклиматизировали к экспериментальным условиям в течение 10 дней. В период акклиматизации сазана кормили основным рационом два раза в день. По истечении времени адаптации эти аквариумы были случайным образом назначены на 4 обработки с 3 повторениями, и рыбу кормили из расчета 2,5 процента от массы тела два раза в день в течение 6 0 дней. Рыбные отходы и половину аквариумной воды ежедневно сливали сифоном и заменяли хорошо аэрированной водой. Параметры качества воды, такие как температура, растворенный кислород и pH, регулярно измерялись и поддерживались на стандартных уровнях для карпа (температура 24:1±0:5C, растворенный кислород 6:8±0:2 мг/л, pH7 :36 ± 0:1 и фотопериод 12D:12L) [29].

2.3. Биометрия и сбор образцов крови. После 24-часового периода голодания всех рыб в каждом аквариуме анестезировали с помощью 200 мг л-1 порошка гвоздики и регистрировали вес каждой рыбы [30]. Показатели роста и выживаемость рассчитывали по общепринятой формуле [7]. Три рыбы на аквариум (9 рыб на обработку) были случайным образом выбраны для сбора образца крови. Образцы крови отбирали через хвостовую вену каждой рыбы с помощью стерильного шприца и вводили в пробирки. Пробирки центрифугировали (5000 об/мин в течение 10 мин при 4°С) [29], после чего супернатант отделяли и хранили при -20°С.

2.4. Тепловой вызов. После 60 дней кормления была проведена провокация тепловым стрессом в соответствии с Dawood et al. [30] исследование в трех повторностях. Во-первых, кормление было прекращено во время теста, и семь голодающих рыб в аквариуме (21 рыба на обработку) содержались в аналогичных условиях с высокой температурой (32°C) в течение 48 часов для теплового стресса. Для повышения температуры до 32°С использовали аквариумные нагреватели, а температуру воды часто проверяли портативными мультипараметрами (YSI, Китай).

2.5. Забор крови и тканей. После контрольного теста всех рыб в каждом аквариуме анестезировали с помощью 200 мг л -1 порошка гвоздики, и отбирали по три рыбы на аквариум (9 рыб на обработку) для сбора образцов крови. Образцы крови отбирали через хвостовую вену каждой рыбы с помощью стерильного шприца и вводили в пробирки. Пробирки центрифугировали (5000 об/мин в течение 10 мин при 4°С) [29], после чего супернатант отделяли и хранили при -20°С.

cistanche in store

2.6. Биохимический анализ. До и после пробных тестов с использованием коммерческих наборов (Pars Azmoon) определяли глюкозу, аланинаминотрансферазу (АЛТ), аспартатаминотрансферазу (АСТ), каталазу (КАТ), глутатионпероксидазу (ГПх), малондиальдегид (МДА) и супероксиддисмутазу (СОД). , Иран). Лизоцимную активность сыворотки определяли по методу Saurabh и Sahoo [31] с турбидиметрией. Сначала готовили суспензию Micrococcus lysodeikticus путем растворения 0,2 мг мл-1 в 0,05 М натрий-фосфатном буфере (pH 6,2). Затем к 2 мл суспензии Micrococcus lysodeikticus добавляли 50 мкл сыворотки, реакционную смесь распределяли по 96-луночному микротитрационному планшету (Hyperion, Германия) и сразу измеряли исходную OD спектрофотометрически при 450 нм. Конечную ОП измеряли после инкубации реакционной смеси при 24°С в течение 1 часа. Единицу активности лизоцима определяли как количество образца, вызывающее снижение поглощения на 0,001/мин лизоцима образца, откалиброванного с использованием стандартной кривой, полученной с лизоцимом куриного яичного белка (Sigma) в PBS. Активность альтернативного комплемента в сыворотке (ACH50) измеряли на основе Yano et al. [32], в которых в качестве мишени использовали эритроциты кролика (эритроциты). Уровни кортизола в сыворотке измеряли конкурентным методом ELISA с использованием коммерческого набора (IBL Co., Gesellschaft für Immunchemie und Immunbiologie).

2.7. Генное выражение. Суммарную РНК печени рыб, собранную после сложного теста, выделяли с использованием набора GeneAll (GeneAll Biotechnology, Сеул, Корея). После оценки качества РНК с помощью электрофореза в агарозных гелях 2 мкг тотальной РНК обрабатывали ДНКазой I и использовали для синтеза первой цепи кДНК с использованием олиго(dT) праймеров, 10 мМ dNTP и обратной транскриптазы в соответствии с инструкцией производителя. инструкции (Thermo Scientific, Германия). Ген-специфические праймеры для ОТ-ПЦР-анализа указаны в таблице 2. Ген бета-актина использовали в качестве внутреннего контроля. КПЦР проводили с использованием RealQ Plus Master Mix Green (AMPLIQONIII) в соответствии с инструкциями производителя. Реакцию, состоящую из 10 мкл смеси SYBR green, 1 мкл разбавленной кДНК, 0,5 мкл каждого праймера и воды Millipore, добавляли до конечного объема 20 мкл. Для проведения реакции использовали следующую программу: 10 мин при 95°С, денатурация при 95°С в течение 10 с, отжиг при 60°С в течение 40 с и удлинение при 72°С в течение 35 с, 40 циклов. Уровень РНК рассчитывали на основе метода 2-ΔΔCT [33]. Для каждого эксперимента было сделано три биологических повтора.

2.8. Статистический анализ. Данные (среднее значение ± стандартное отклонение) анализировали с помощью однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA) с последующим тестом Дункана с несколькими диапазонами для сравнения средних значений между группами. Перед анализом данные оценивали на нормальность и однородность дисперсии с помощью критерия Шапиро-Уилка и критерия Левена соответственно. Двусторонний дисперсионный анализ также использовался для проверки влияния диеты, теплового стресса и их взаимодействий. Статистический анализ проводился с использованием программного обеспечения SPSS версии 23, и P < 0:05 был принятым уровнем значимости.

cistanche cvs

3. Результаты

3.1. Производительность роста. Были значительные различия в показателях роста, и самые высокие FBW, WG, SGR и FI наблюдались в T2 и T3 (таблица 3, P <0:05). FCR был значительно снижен в кверцетине, вскармливаемом рыбой (таблица 3, P< 0:05).

3.2. Сывороточный иммунный ответ. Активность лизоцима и ACH50 была заметно снижена, когда карп подвергался тепловому стрессу, а самая низкая активность наблюдалась у рыб, получавших контрольный рацион, и у рыб, получавших рацион с добавками, представляя самые высокие уровни (Таблица 4, P < 0:05). До и после теплового стресса различные уровни кверцетина значительно повышали активность ACH50 и лизоцима, а самая высокая активность наблюдалась у рыб, получавших 400 (T2) и 600 (T3) мг/кг кверцетина (таблица 4, P <0:05).

cistanche vitamin shoppe

3.3. Антиоксидантные ферменты. Каталаза, MDA и GPx были значительно повышены у рыб, подвергшихся тепловому стрессу, причем самый высокий уровень наблюдался у рыб, получавших контрольный рацион, а у рыб, получавших корм с добавками кверцетина, были самые низкие уровни (таблица 4, P < {{3}). }:05). Уровни СОД значительно снизились у рыб, подвергшихся тепловому стрессу (при объединении всех воздействий); Кроме того, наблюдалась значительная разница в уровнях СОД между видами лечения до и после тепловой нагрузки, и самый высокий уровень был зарегистрирован в T2 на обеих фазах (таблица 5, P <0:05).

3.4. Параметры напряжения. До и после теплового стресса уровни глюкозы и кортизола были значительно выше в контрольной группе по сравнению с лечением добавками кверцетина (таблица 6, P < 0:05). Воздействие высоких температур на карпа приводило к значительному увеличению АСТ и АЛТ во всех вариантах, но у рыб, получавших 6{11}}0 мг/кг кверцетина, были самые низкие уровни (Таблица 6, P < 0:05). Более того, до и после провокации самая высокая и самая низкая активность АЛТ и АСТ наблюдалась в контрольной группе и Т3 соответственно (таблица 6, P < 0:05).

cistanches

3.5. Генное выражение. После воздействия теплового стресса экспрессия GPx (рис. 1(а)) заметно повышалась, а самые высокие уровни РНК наблюдались у рыб, которым давали 400 мг/кг кверцетина (P <0: 05). Никаких заметных эффектов не наблюдалось для GR (рис. 1(b)) и IL8 (рис. 1(c)), но они были выше у рыб, которых кормили кормами с добавками кверцетина (P > 0:05).

Экспрессия гена лизоцима была заметно выше у карпа, получавшего корм с добавлением кверцетина, чем в контрольной группе (рис. 1(d)).

4. Дискуссия

В этом исследовании включение кверцетина в рацион значительно улучшило рост и эффективность корма у обыкновенного карпа. Соответственно, наилучшие значения WG, SGR, FI и FCR были получены у рыб, получавших рационы с добавками кверцетина 400 и 600 мг/кг. Предыдущие результаты показали, что диетический кверцетин оказывает положительное влияние на WG, SGR и FCR у нильской тиляпии (Oreochromis niloticus) [34], белого амура (Ctenopharyngodon idella) () и карпа обыкновенного [13]. Стимулирующий эффект кверцетина на показатели роста рыб может быть связан с их большей эффективностью в стимуляции секреции пищеварительных ферментов, таких как протеаза, амилаза и липаза [13, 34], уменьшением обилия вредных бактерий в кишечнике и стимулированием популяций полезные бактерии [35], улучшающие барьерную функцию кишечника и улучшающие площадь поверхности кишечных ворсинок и бокаловидных клеток [36].

cistanche tubulosa benefits

Активность ACH50 является важным параметром, который полезен при оценке гуморального неспецифического иммунного ответа у рыб. Сообщается о снижении уровня ACH50 в сыворотке в различных стрессовых ситуациях, которым подвергаются рыбы. В настоящем исследовании активность ACH50 в сыворотке значительно увеличилась в группе, получавшей кверцетин в дозах 400 и 600 мг/кг до стресса и после стресса, по сравнению с контрольной группой. В заключение, поскольку печень является основным источником белков комплемента, повышение уровня ACH50 можно объяснить улучшением здоровья и функции печени. Наши результаты в отношении увеличения активности ACH50 полностью согласуются с результатами более ранних исследований в рационах карпа, включающих 200 или 800 мг/кг кверцетина [16]. Более того, результаты согласуются с предыдущими исследованиями, показавшими, что экзогенные кормовые добавки успешно предотвращают постстрессовое снижение активности комплемента [37, 38].

Лизоцим является важным антимикробным пептидом врожденной иммунной системы, инвазивным патогенным микроорганизмам. Значительное снижение активности лизоцима в сыворотке обнаружено у контрольной группы рыб, выдерживаемых при 32°С в течение 48 часов. Аналогичное снижение лизоцимной активности сыворотки при более высоких температурах наблюдалось у нильской тиляпии, Oreochromis niloticus [39]. В настоящем исследовании активность лизоцима в сыворотке была значительно увеличена во всех группах, получавших кверцетин, до и после стресса по сравнению с контрольной группой. Это говорит о том, что добавки с кверцетином ингибируют пост-высокотемпературную стрессовую иммуносупрессию.

Параллельно с нашим исследованием уровни лизоцима также были повышены у некоторых видов рыб, которых кормили кормами, содержащими кверцетин. Например, у C. carpio, получавшего рацион, содержащий 200 или 800 мг/кг кверцетина, наблюдалось повышение уровня лизоцима в сыворотке, кишечнике и слизи [16]. Ван и др. [18] добавляли 0,01, 0,1, 1, 10, 100 и 1000 мкг/л кверцетина в воду для выращивания рыбок данио (Danio rerio) и сообщали, что активность лизоцима в сыворотке была значительно выше в группе, получавшей 1 мкг/л кверцетина, чем в группе, получавшей контрольная группа.

Хорошо известно, что глюкоза сыворотки используется в качестве неспецифического показателя стресса в исследованиях рыб [40, 41]. В этом исследовании добавки кверцетина значительно снизили содержание глюкозы в сыворотке в группе до стресса. Имеются некоторые сообщения о гипогликемических эффектах кверцетина [42, 43]. Это было подтверждено в недавнем исследовании, в котором кверцетин снижает уровень глюкозы в сыворотке крови карпа [16]. Однако, в отличие от нашего исследования, уровень глюкозы в сыворотке крови у серебряного сома Rhamdia queen [12] и тупорылого леща Megalobrama amblycephala [44], которых кормили кормом, содержащим кверцетин, не изменился.

Супероксиддисмутаза (SOD), каталаза (CAT) и глутатионпероксидаза (GPx) являются основными ферментами, которые удаляют активные формы кислорода (АФК) и детоксицируют H2O2 и гидропероксиды соответственно. Кроме того, малоновый диальдегид (МДА) часто используется в качестве биомаркера перекисного окисления липидов. Наши результаты в отношении увеличения СОД и снижения активности МДА полностью согласуются с результатами более ранних исследований карпа карпа C. carpio, в рацион которого входили 800 мг/кг кверцетина. Точно так же Ибрагим и др. [45] сообщили об увеличении SOD и GPx и уменьшении эффекта MDA кверцетина у нильской тиляпии, Oreochromis niloticus.

Более того, экспрессия мРНК СОД [46] и уровни активности СОД и КАТ в головном мозге, жабрах, печени и/или мышцах [12] были выше у рыб, получавших корм с кверцетином. Параметры SOD, CAT, MDA и GPx играют важную роль в антиоксидантной реакции в различных стрессовых условиях, таких как пестициды [47], металлы [48], высокие температуры [49, 50], гипоксия [50] и низкие температуры [51]. Однако исследований влияния кверцетина на антиоксидантную способность рыб в условиях высокотемпературного стресса не проводилось. В настоящем исследовании сниженные уровни CAT, MDA и GPx и повышенные уровни SOD, наблюдаемые в условиях пост-высокотемпературного стресса, указывают на значительный антиоксидантный эффект кверцетина. Точно так же пищевой экстракт антрахинона, особенно на уровне 0,1- 0,2 процента, значительно увеличивал СОД и снижал уровни МДА в печени у M. rosenbergii при высокотемпературном стрессе [25].

Активность сывороточных ферментов считается важным индикатором повреждения тканей; например, АСТ и АЛТ являются индикаторами повреждения печени, а лактатдегидрогеназа (ЛДГ) — для повреждения печени или мышц у рыб [52]. Таким образом, увеличение содержания этих ферментов в крови может быть связано с повреждением печени и мышечной ткани. Предыдущие исследования показали, что активность АЛТ и АСТ в сыворотке снижалась, когда рыб кормили кверцетином [13, 16]. До сих пор в литературе не было обнаружено исследований влияния кверцетина при высокотемпературном стрессе на уровни ферментов в сыворотке рыб. Однако в работе [25] сообщается, что активность АСТ и АЛТ у пресноводных креветок (M. rosenbergii), получавших рацион, содержащий экстракт антрахинона из R. officinale Bail, в условиях высокотемпературного стресса была значительно ниже, чем у контрольной рыбы. В этом исследовании уровни АСТ и АЛТ в сыворотке крови (за исключением 200 мг/кг) снижались у рыб, которых кормили кормами с добавками кверцетина перед высокотемпературным стрессом. Эта тенденция сохранялась и после высокотемпературного стресса.

Низкий уровень глюкозы в сыворотке у рыб, подвергшихся высокотемпературному стрессу, может быть результатом недоедания, заболеваний печени и воспаления [25, 50, 53]. Это может быть связано с увеличением использования глюкозы в периферических тканях, что, вероятно, связано с увеличением потребности в энергии, вызванной реакцией на стресс [54]. Аналогичное снижение уровня глюкозы в сыворотке крови при более высокой температуре (21°С) наблюдалось у радужной форели Oncorhynchus mykiss [50]. Однако, в отличие от наших данных, у учанского леща M. amblycephala в условиях высокотемпературного стресса было зарегистрировано повышение уровня глюкозы в крови [26]. Эти разные результаты могут быть связаны с различиями в условиях выращивания, времени воздействия, видах рыб, размерах и/или возрасте.

Кортизол крови является одним из важнейших показателей реакции рыб на тепловой стресс [55]. В этом исследовании уровни кортизола были значительно ниже у рыб, получавших различные уровни кверцетина до теплового стресса. Кроме того, у рыб, получавших корм с добавлением кверцетина, после теплового стресса наблюдалось значительно более низкое содержание кортизола, что подчеркивает защитный потенциал добавок кверцетина в отношении метаболизма обыкновенного карпа. Точно так же нильская тиляпия, получавшая диетический бутират натрия, показала снижение уровня кортизола при воздействии теплового стресса [30]. В этом исследовании кортизол был значительно ниже во время теплового стресса у рыб, которых кормили кверцетином, по сравнению с контрольной группой. Эти результаты могут быть связаны с антистрессовым действием кверцетина, который ингибирует домен повышенного кортизола.

В соответствии с этими выводами можно предположить, что кверцетин (400-600 мг/кг) может быть полезным веществом для лечения и защиты клеток от возможного окислительного стресса.

cistanche sleep

Доступность данных

Наборы данных, созданные во время и/или проанализированные в ходе текущего исследования, доступны у соответствующих авторов по обоснованному запросу.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов

Благодарности

Это исследование было поддержано Университетом Забол (Иран) с кодом гранта (IR-UOZ-GR-6313). Эта работа была частично поддержана Чиангмайским университетом.