8. Выводы

Молекулы природного происхождения традиционно используются в продуктах для защиты кожи (таблица 1, инвентаризация CosIng). Следовательно, природные соединения, выделенные и/или полученные с помощью биотехнологических инструментов из микроорганизмов, уже используются в дерматологических целях в косметических препаратах для местного применения. Эти продукты не только эстетически улучшают внешний вид кожи, но и предотвращают и/или лечат возрастные кожные заболевания. Помимо «установленных» молекул, существует несколько небольших молекул и/или ферментов, полученных из микроорганизмов, которые имеют большой потенциал для использования в косметике или космецевтических препаратах (таблица 1).

Согласно соответствующим исследованиям, цистанхе — распространенное растение, известное как «чудодейственное растение, продлевающее жизнь». Его основным компонентом являетсяцистанозид, который имеет различные эффекты, такие какантиоксидант, противовоспалительное средство, ипродвижение иммунной функции. Механизм взаимодействия цистанхе икожаотбеливаниезаключается в антиоксидантном действии цистанхегликозиды. Меланин в коже человека образуется в результате окисления тирозина, катализируемоготирозиназа, а реакция окисления требует участия кислорода, поэтому свободные радикалы кислорода в организме становятся важным фактором, влияющим на выработку меланина. Цистанхе содержит цистанозид, который является антиоксидантом и может уменьшить образование свободных радикалов в организме, таким образомзапрещающиймеланинпроизводство.

Нажмите на порошок Cistanche Bulk

Для получения дополнительной информации:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Интересно, что некоторые биомолекулы, уже включенные в Европейский реестр разрешенных косметических ингредиентов (CosIng inventory) [14], зарегистрированы в связи с одной из их биологических активностей, но по-разному используются в косметических целях. Характерным примером является койевая кислота, которая зарегистрирована как «антиоксидант», в то время как основным применением в косметике является ее сильная антитирозиназная активность и, следовательно, ее применение в качестве средства для отбеливания кожи (таблица 1).

Принимая во внимание огромное микробное биоразнообразие и микробную адаптацию практически к любой окружающей среде на Земле, следует ожидать, что микробы представляют собой чрезвычайно разнообразный набор очень разнообразных структурных каркасов биомолекул с потенциальными защитными свойствами для кожи. Хотя исследования морской среды начали проводиться позже, чем исследования наземной среды, у нас есть несколько случаев, когда косметические применения и патенты отдавали предпочтение морским микроорганизмам. Как упоминалось в случае MAA, известных своей фотозащитной активностью, они включены в несколько патентов на натуральные УФ-фильтры. Однако большинство из них было разработано с использованием микроорганизмов из морской среды (72,2%), в то время как патенты, разработанные на наземных и пресноводных микроорганизмах, не превышают 21,4% и 2,4% соответственно [135]. Это исследование показывает, что до настоящего времени в некоторых случаях земная среда игнорировалась.

Конфликт интересов:Авторы объявили, что нет никаких конфликтов интересов.

Сокращения

УФБ ультрафиолет В

Рекомендации

1. Ма, Т.; Дэн, З .; Лю, Т. Стратегии микробного производства и применение ликопина и других терпеноидов. Мировой Дж. Микробиол. Биотехнолог. 2016. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

2. Коринальдези, К.; Бароне, Г.; Марчеллини, Ф .; Делл'Анно, А .; Дановаро, Р. Молекулы, полученные из морских микробов, и их потенциальное использование в космецевтических и косметических продуктах. Mar. Drugs 2017, 15, 118. [CrossRef]

3. Лобановская М.; Пилла, Г. Открытие пенициллина и устойчивость к антибиотикам: уроки на будущее? Дж. Биол. Мед. 2017, 90, 135–145.

4. Раджа, А.; Прабакарана, П. Актиномицеты и обзор лекарств. Являюсь. Дж. Друг Дисков. Дев. 2011, 1, 75–84. [Перекрестная ссылка]

5. Берди Дж. Биоактивные микробные метаболиты. Дж. Антибиот. 2005, 58, 1–26. [В паблике]

6. Феррейра, А.; Весино, X .; Феррейра, Д.; Круз, Дж. М.; Молдес, А.Б.; Родригес, Л.Р. Новые косметические составы, содержащие биосурфактант из Lactobacillus paracasei. Коллоидный прибой. Б Биоинтерфейсы 2017, 155, 522–529. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

7. Аргиропулу, А.; Алигианнис, Н .; Тругакос, ИП; Скалцунис А.Л. Природные соединения с омолаживающей активностью. Нац. Произв. 2013, 30, 1412–1437. [Перекрестная ссылка]

8. Кавинато, М.; Янсен-Дурр, П. Молекулярные механизмы вызванного УФ-В старения дермальных фибробластов и его значение для фотостарения кожи человека. Эксп. Геронтол. 2017, 94, 78–82.

9. Веларде, MC; Демария, М. Ориентация на стареющие клетки: возможные последствия для замедления старения кожи: мини-обзор. Геронтология 2016, 62, 513–518.

10. Троугакос, ИП; Сести, Ф .; Цакири, Э .; Горгулис, В.Г. Неферментативные посттрансляционные модификации белков и дерегуляция сети протеостаза при канцерогенезе. Ж. Протеомика 2013, 92, 274–298.

11. Склироу, А.; Папанагноу, Э.Д.; Фокиалакис, Н.; Trougakos, IP Химиопрофилактика рака путем активации протеостатических модулей. Рак Летт. 2018, 413, 110–121. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

12. Отчеты об исследованиях рынка. (по состоянию на 22 августа 2017 г.).

13. Хайд, К.Д.; Бахкали, А.Х.; Мусульманин, М.А. Грибы — необычный источник косметики. Грибные водолазы. 2010, 43, 1–9. [Перекрестная ссылка]

14. Инвентаризация затрат. Доступно в Интернете: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_en (по состоянию на 22 марта 2018 г.).

15. Чай, ТТ; Закон, ЮК; Вонг, ФК; Ким, С.К. Открытие с помощью ферментов антиоксидантных пептидов из съедобных морских беспозвоночных: обзор. Mar. Drugs 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Кауппила, ТЭС; Кауппила, JHK; Ларссон, Н.Г. Митохондрии млекопитающих и старение: обновленная информация. Клетка. Метаб. 2017, 25, 57–71. [Перекрестная ссылка]

17. Кусумавати, И.; Индраянто Г. Натуральные антиоксиданты в косметике. Стад. Нац. Произв. хим. 2013, 40, 485–505.

18. Абрамович, Х.; Гробин, Б.; Ульрих, Н.П.; Cigi´c, B. Актуальность и стандартизация анализов антиоксидантов in vitro: ABTS, DPPH и Folin-Ciocalteu. Дж. Хим. 2018, 2018, 1–9. [Перекрестная ссылка]

19. Хуанг, Вайоминг; Кай, ЮЗ; Син, Дж. Потенциальный антиоксидантный ресурс: эндофитные грибы из лекарственных растений. Экон. Бот. 2007, 61, 14–30. [Перекрестная ссылка]

20. Данагудар, А.; Джоши, CG; Кумар, RS; Пойя, Дж.; Нивья, Т .; Хуликере, ММ; Appaiah, KAA Молекулярное профилирование и антиоксидант, а также антибактериальный потенциал полифенол-продуцирующего эндофитного грибка Aspergillus austroafricanus CGJ-B3. Микология 2017, 8, 28–38. [Перекрестная ссылка]

21. Колла, Л.М.; Ферлонг, Э.Б.; Коста, Я.В. Антиоксидантные свойства Spirulina (Arthospira) platensis, культивируемого при различных температурах и азотных режимах. Браз. Арка биол. Технол. 2007, 50, 161–167. [Перекрестная ссылка]

22. Миранда, штат Массачусетс; Сато, С .; Манчини-Фильо, Дж. Антиоксидантная активность микроводоросли Chlorella vulgaris, культивируемой в особых условиях. Болл. Чим. Ферма. 2001, 140, 165–168.

23. Шалаби Э.С.; Shanab, SMM Антирадикальная и антиоксидантная активность различных экстрактов Spirulina platensis в отношении радикальных анализов DPPH и ABTS. Индийский J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [Перекрестная ссылка]

24. Гойрис К.; Мюйларт, К.; Форспулс, С .; Нотен, Б.; Де Паэпе, Д.; Г.Дж., Б.; Де Куман, Л. Обнаружение флавоноидов в микроводорослях разных эволюционных линий. Дж. Физиол. 2014, 50, 483–492. [Перекрестная ссылка]

25. Херес-Мартель, И.; Гарсия-Поса, С.; Родригес-Мартель, Г.; Рико, М .; Афонсу-Оливарес, К.; Гомес-Пинчетти, Дж. Л. Фенольный профиль и антиоксидантная активность неочищенных экстрактов штаммов микроводорослей и цианобактерий. J. Качество продуктов питания. 2017, 4, 1–8. [Перекрестная ссылка]

26. Сингх, ДП; Прабха, Р .; Верма, С.; Мина, К.К.; Яндигери, М. Антиоксидантные свойства и содержание полифенолов в наземных цианобактериях. 3 Биотех. 2017. [Перекрестная ссылка]

27. Лю, Ю.; Нэн, Л.; Лю, Дж.; Ян, Х .; Чжан, Д.; Хан, X. Выделение и идентификация эндофитов, продуцирующих ресвератрол, из винного винограда Каберне Совиньон. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. Ши, Дж.; Цзэн, В.; Лю, Ю.; Пан, Z. Alternaria sp. MG1, грибок, продуцирующий ресвератрол: выделение, идентификация и оптимальные условия культивирования для производства ресвератрола. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2012, 95, 369–379. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

29. Бакстер, Р.А. Антивозрастные свойства ресвератрола: обзор и отчет о новом мощном антиоксидантном средстве по уходу за кожей. Дж. Космет. Дерматол. 2008, 7, 2–7. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

30. Чжан, Дж.; Ши, Дж.; Лю, Ю. Биоконверсия ресвератрола с использованием покоящихся клеток немодифицированных генетически Alternaria sp. Биотехнолог. заявл. Биохим. 2013, 60, 236–243. [Перекрестная ссылка]

31. Ан, С.М.; Кох, Дж. С.; Boo, YC P-кумаровая кислота не только ингибирует активность тирозиназы человека in vitro, но и ингибирует меланогенез в клетках, подвергшихся воздействию УФ-В. Фитотер. Рез. 2010, 24, 1175–1180.

32. Лурит, Н.; Канлаяваттанакул, М. Антиоксидантная активность и фенолы семян Passifflora edulis, извлеченных из остатков производства сока. Дж. Олео. науч. 2013, 62, 235–240. [Перекрестная ссылка]

33. Лопес-Бурильо, С.; Тан, DX; Мэйо, Дж. К.; Сайнс, РМ; Манчестер, Калифорния; Reiter, RJ Мелатонин, ксантуреновая кислота, ресвератрол, EGCG, витамин С и альфа-липоевая кислота по-разному снижают окислительное повреждение ДНК, вызванное реагентами Фентона: исследование их индивидуального и синергетического действия. Дж. Шишковидная железа. Рез. 2003, 34, 269–277. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

34. Сатоока, Х.; Кубо, И. Ресвератрол как ингибитор типа kcat для тирозиназы: потенцированный ингибитор меланогенеза. биоорг. Мед. хим. 2012, 20, 1090–1099. [Перекрестная ссылка]

35. Ли, М.; Килдегор, КР; Чен, Ю .; Родригес, А .; Бородина, И.; Нильсен, Дж. Производство ресвератрола de novo из глюкозы или этанола с помощью модифицированных Saccharomyces cerevisiae. Метаб. англ. 2015, 32, 1–11. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

36. Лим, К.Г.; Фаулер, З.Л.; Хьюллер, Т .; Шеффер, С.; Кофффас, М.А. Высокопроизводительное производство ресвератрола в сконструированной Escherichia coli. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2011, 77, 3451–3460. [Перекрестная ссылка]

37. Сидор Т.; Шеффер, С.; Болес, Э. Значительное увеличение производства ресвератрола рекомбинантными штаммами промышленных дрожжей при использовании богатой среды. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2010, 76, 3361–3363. [Перекрестная ссылка]

38. Балестрацци, А.; Бонадей, М .; Кальвио, К.; Маттиви, Ф .; Карбонера, Д. Ассоциированные с листьями бактерии трансгенного белого тополя, продуцирующие ресвератролоподобные соединения: выделение, молекулярная характеристика и оценка устойчивости к окислительному стрессу. Может. Дж. Микробиол. 2009, 55, 829–840. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

39. Сяо, Дж.; Чжан, В.; Гао, Ю.-К.; Тан, Дж.-Дж.; Чжан, А.-Л.; Гао, Ж.-М. Вторичные метаболиты эндофитной Botryosphaeria dothidea Melia azedarach и их противогрибковая, антибактериальная, антиоксидантная и цитотоксическая активность. Дж. Агрик. Пищевая хим. 2014, 62, 3584–3590. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

40. Моу, Ю.; Мэн, Дж .; Фу, Х .; Ван, X .; Тиан, Дж .; Ван, М .; Пэн, Ю .; Чжоу, Л. Антимикробная и антиоксидантная активность и влияние добавления 1-гексадецена на выход пальмарумицина С2 и С3 в жидкой культуре эндофитного гриба Berkleasmium sp. Дзф12. Молекулы 2013, 18, 15587–15599. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

41. Керксик, К.; Уиллоуби, Д. Антиоксидантная роль добавок глутатиона и N-ацетилцистеина и окислительный стресс, вызванный физическими упражнениями. Дж. Междунар. соц. Спорт Нутр. 2005, 2, 38–44. [Перекрестная ссылка]

42. Сонталия, С.; Даулатабад, Д.; Саркар, Р. Глутатион как средство для отбеливания кожи: факты, мифы, доказательства и противоречия. Индийский Дж. Дерматол. Венереол. Лепрол. 2016, 82, 262–272. [Перекрестная ссылка]

43. Фей, Л.; Ван, Ю.; Чен, С. Улучшение производства глутатиона за счет экспрессии генов у Pichia pastoris. Биопроцесс. Биосист. англ. 2009, 32, 729–735. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

44. Ван, К.; Чжан, Дж.; Ву, Х .; Ли, З .; Ye, Q. Экспрессия гетерологичного гена gshF в различных векторных системах в Escherichia coli для повышения продукции глутатиона. Дж. Биотехнология. 2015, 214, 63–68. [Перекрестная ссылка]

45. Палоцца, П.; Крински, Н.И. Астаксантин и кантаксантин являются мощными антиоксидантами в мембранной модели. Арка Биохим. Биофиз. 1992, 267, 291–295. [CrossRef] 46. Ямамото, К.; Хара, Кентукки; Морита, Т .; Нисимура, А .; Сасаки, Д.; Исии, Дж. Повышение выработки астаксантина у Xanthophyllomyces dendrorhous с помощью эффективного метода полного удаления генов. микроб. Сотовый факт. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. Трипати, У.; Сарада, Р.; Равишанкар Г.А. Влияние условий культивирования на рост зеленой водоросли Haematococcus pluvialis и продукцию астаксантина. Акта Физиол. Растение. 2002, 24, 323–329. [Перекрестная ссылка]

48. Мюллер, Л.; Бем, В. Антиоксидантная активность соединений бета-каротина в различных анализах in vitro. Молекулы 2011, 16, 1055–1069. [Перекрестная ссылка]

49. Чжу, Ф.; Лу, Л.; Фу, С .; Чжун, X .; Ху, М.; Денг, З. Целенаправленная разработка и масштабирование перепроизводства ликопина в Escherichia coli. Процесс. Биохим. 2015, 50, 341–346. [Перекрестная ссылка]

50. Нелис, Х.Дж.; Де Линхер, А. П., Повторное исследование Brevibacterium sp. штамм KY-4313 в качестве источника кантаксантина. заявл. Окружающая среда. микробиол. 1989, 55, 2505–2510.

51. Синдху, Э. Р.; Прити, KC; Куттан Р. Антиоксидантная активность каротиноидов лютеина in vitro и in vivo. Индийский J. Exp. биол. 2010, 843–848.

52. Дель Кампо, Дж. А.; Морено, Дж.; Родригес, Х .; Анхелес Варгас, М.; Ривас, Дж.; Герреро, М.Г. Содержание каротиноидов в хлорофитных микроводорослях: факторы, определяющие накопление лютеина у Muriellopsis sp. (Хлорофиты). Дж. Биотехнология. 2000, 76, 51–59. [Перекрестная ссылка]

53. Венугопалан, В.; Трипати, СК; Нахар, П.; Сарадхи, ПП; Дас, Р. Х.; Gautam, HK Характеристика изомеров кантаксантина, выделенных из новой почвы Dietzia sp. и их антиоксидантной активности. Дж. Микробиол. Биотехнолог. 2013, 23, 237–245. [Перекрестная ссылка]

54. Махапатра, С.; Банерджи, Д. Оценка антиоксидантной активности экзополисахарида из эндофитного Fusarium solani SD5 in vitro. Междунар. Дж. Биол. макромол. 2013, 53, 62–66. [Перекрестная ссылка]

55. Чжэн, Л.П.; Цзоу, Т .; Ма, Ю.Дж.; Ван, JW; Zhang, YQ Антиоксидантная активность экзополисахаридов эндофитной бактерии Bacillus cereus SZ1, защищающая от повреждений ДНК. Молекулы 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. Лю, Дж.; Луо, Дж .; Е, Х .; Солнце, Ю.; Лу, З .; Цзэн, X. Производство, характеристика и антиоксидантная активность экзополисахаридов in vitro из эндофитной бактерии Paenibacillus polymyxa EJS-3. углевод. Полим. 2009, 78, 275–281. [Перекрестная ссылка]

57. Лю, Дж.; Луо, Дж .; Е, Х .; Солнце, Ю.; Лу, З .; Цзэн, X. Оптимизация среды и структурная характеристика экзополисахаридов из эндофитной бактерии Paenibacillus polymyxa EJS-3. углевод. Полим. 2010, 79, 206–213. [Перекрестная ссылка]

58. Сяо Р.; Чжэн, Ю. Обзор внеклеточных полимерных веществ (ВПС) микроводорослей и их применения. Биотехнолог. Доп. 2016, 34, 1225–1244. [Перекрестная ссылка]

59. Чен Ю.; Мао, В .; Тао, Х .; Чжу, В .; Ци, Х.; Чен, Ю. Структурная характеристика и антиоксидантные свойства экзополисахарида, продуцируемого мангровым эндофитным грибком Aspergillus sp. Y16. Биоресурс. Технол. 2011, 102, 8179–8184. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

60. Серрато, Р.В.; Сассаки, Г.Л.; Круз, Л.М.; Педроса, FO; Горин, Пенсильвания; Якомини, М. Условия культивирования для производства кислого экзополисахарида азотфиксирующей бактерией Burkholderia tropica. Может. Дж. Микробиол. 2006, 52, 489–493. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

61. Трабелси, Л.; Чайеб, О .; Мнари, А .; Абид-Эссафифи, С.; Алейя Л. Частичная характеристика антиоксидантной и антипролиферативной активности водных внеклеточных полисахаридов термофильных микроводорослей Graesiella sp. Дополнение БМК. Альтерн. Мед. 2016. [Перекрестная ссылка]

62. Ромей, К.; Гонсалес Р.; Ледон, Н.; Рамирес, Д.; Римбау, В. С-фикоцианин: билипротеин с антиоксидантным, противовоспалительным и нейропротекторным действием. Курс. Белковый пепт. науч. 2003, 4, 207–216. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

63. Тасар, О.К.; Эрдал, С .; Таскин, М. Производство хитозана психротолерантными Rhizopus oryzae в нестерильных условиях открытой ферментации. Междунар. Дж. Биол. макромол. 2016, 89, 428–433. [Перекрестная ссылка]

64. Асачи Р.; Карими, К. Повышенное производство этанола и хитозана из пшеничной соломы с помощью Mucor indicus с минимальным потреблением питательных веществ. Процесс. Биохим. 2013, 48, 1524–1531. [Перекрестная ссылка]

65. Логеш, АР; Тиллаимахарани, К.А.; Шармила, К .; Калаисельвам, М.; Раффиффи, С.М. Производство хитозана из эндолитических грибов, выделенных из среды мангровых зарослей, и его антагонистическая активность. Азиатский пакет. Дж. Троп. Биомед. 2012, 2, 140–143. [Перекрестная ссылка]

66. Ордоньес, Л.; Гарсия, Дж.; Боланьос, Г. Производство хитина и хитин-глюкановых комплексов из биомассы Aspergillus niger с использованием субкритической воды. В материалах Иберо-американской конференции по сверхкритическим жидкостям, Картахена, Колумбия, 1–5 апреля 2013 г.

67. Го, Дж.; Рао, З .; Ян, Т .; Ман, З .; Сюй, М .; Чжан, X. Высокий уровень производства меланина новым изолятом Streptomyces kathirae. ФЭМС микробиол. лат. 2014, 357, 85–91. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

68. Тарангини, К.; Мишра, С. Производство меланина почвенным микробным изолятом на экстракте фруктовых отходов: двухэтапная оптимизация ключевых параметров. Биотехнолог. 2014, 4, 139–146. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

69. Бекстед, А.А.; Чжан, Ю .; Хилмер, Дж. К.; Смит, Х.Дж.; Бермель, Э.; Форман, С. М. Сверхбыстрая дезактивация бактериального пигмента виолацеина в возбужденном состоянии. Дж. Физ. хим. 2017. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

70. Ахмад, Вашингтон; Юсоф, Новая Зеландия; Нордин, Н .; Закария, З.А.; Резали, М.Ф. Производство и характеристика виолацеина локально изолированными Chromobacterium violaceum, выращенными в сельскохозяйственных отходах. заявл. Биохим. Биотехнолог. 2012, 167, 1220–1234. [Перекрестная ссылка]

71. Ван, Х.; Цзян, П.; Лу, Ю.; Руан, З .; Цзян Р.; Син, X.-Х. Оптимизация условий культивирования для продукции виолацеина новым штаммом Duganella sp. БИ 2. Биохим. англ. Дж. 2009, 44, 119–124. [Перекрестная ссылка]

72. Патхак, Дж.; Сонкер, А.С.; Рича, Р.; Раджниш, Р.; Каннауджия, ВК; Сингх, В.; Ахмед, Х. Скрининг и частичная очистка фотозащитного пигмента сцитонемина из цианобактериальных корок, обитающих на исторических памятниках в Варанаси и его окрестностях, Индия. микробиол. Рез. 2017. [Перекрестная ссылка]

73. Чен, Дж.; Чжао, Л.; Сюй, Дж.; Ян, Р .; Он, С.; Ян, X. Определение окисленного сцитонемина в культуре Nostoc commune Vauch, культивируемой в различных условиях, с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии в сочетании с тройной квадрупольной масс-спектрометрией. Дж. Заявл. Фикол. 2013, 25, 1001–1007. [Перекрестная ссылка]

74. Накашима, Т.; Анзай, К.; Кувахара, Н.; Комаки, Х .; Миядо, С .; Хараяма С. Физико-химические характеристики ингибитора тирозиназы, продуцируемого Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815. Biol. фарм. Бык. 2009, 32, 832–836. [Перекрестная ссылка]

75. Курбаноглу, Э.Б.; Оздал, М.; Оздал, О.Г.; Алгур, О.Ф. Повышенное производство продигиозина Serratia marcescens MO-1 с использованием пептона из бараньего рога. Браз. Дж. Микробиол. 2015, 46, 631–637. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

76. Борич М.; Даневчич, Т .; Стопар, Д. Продигиозин из Vibrio sp. ДСМ 14379; новый УФ-защитный пигмент. микроб. Экол. 2011, 62, 528–536. [Перекрестная ссылка]

77. Лоуренс, КП; Гачеса, Р.; Лонг, ПФ; Янг, А. Р. Молекулярная фотозащита кератиноцитов человека in vitro с помощью встречающегося в природе микоспориноподобного аминокислотного полиэтилена. бр. Дж. Дерматол. 2017, 178, 1353–1363. [Перекрестная ссылка]

78. Растоги, Р.П.; Инчароенсакди, А. Характеристика соединений, экранирующих УФ-излучение, микоспориноподобных аминокислот и сцитонемина в цианобактериях Lyngbya sp. 2555 д.е. ФЭМС микробиол. Экол. 2014, 87, 244–256. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

79. Либкинд, Д.; Молин, М .; Соммаруга, Р .; Сампайо, JP; ван Брук, М. Филогенетическое распространение грибкового циклоспорина в Pucciniomycotina (Basidiomycota). Дрожжи (Чичестер, Англия) 2011, 28, 619–627. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

80. Когей Т.; Гостинкар, К.; Фолькманн, М .; Горбушина, А.А.; Гунде-Симерман, Н.; Когей, Т .; Горбушина А.А. Микоспорины экстремофильных грибов - новые комплементарные осмолиты? Окружающая среда. хим. 2006, 3, 105–110. [Перекрестная ссылка]

81. Вэй, С.; Сюй, Н.; Джи, З. Идентификация продуцирующего койевую кислоту Aspergillus afflatus F52. Акта микробиол. Грех. 2014, 1155–1160.

82. Эль-Аасар, С.А. Изучение культуральных условий продукции койевой кислоты Aspergillus parasiticus. Междунар. Дж. Агрик. биол. 2006, 8, 468–473.

83. Мохамад Р.; Арифф, А.Б. Биотрансформация различных источников углерода в койевую кислоту с помощью системы ферментов, связанных с клетками A. afflatus Link 44-1. Биохим. англ. Дж. 2007, 35, 203–209. [Перекрестная ссылка]

84. Чжао, Л.; Ким, Дж. К.; Пайк, MJ; Ли, В .; Hur, JS. Многофункциональное средство для защиты кожи от УФ-излучения (3R)-5-гидроксимеллеин, продуцируемое эндолитным грибком, выделенным из Parmotrema austrosinense. Молекулы 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. Робледо, А.; Агилера-Карбо, А .; Родригес Р.; Мартинес, Дж. Л.; Гарза, Ю.; Агилар, К.Н. Производство эллаговой кислоты Aspergillus niger при твердофазной ферментации остатков граната. J. Ind. Microbiol. Биотехнолог. 2008, 35, 507–513. [Перекрестная ссылка]

86. Смит, В. П. Влияние местного L (плюс) молочной кислоты и аскорбиновой кислоты на отбеливание кожи. Междунар. Дж. Космет. науч. 1999, 21, 33–40. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

87. Маас, Р. Х.; Спрингер, Дж.; Эггинк, Г.; Weusthuis, RA Метаболизм ксилозы в грибе Rhizopus oryzae: влияние роста и дыхания на продукцию L плюс -молочной кислоты. J. Ind. Microbiol. Биотехнолог. 2008, 35, 569–578. [Перекрестная ссылка]

88. Ши, Иллинойс; Ван, Ю.Т. Производство поли(гамма-глутаминовой кислоты) из микроорганизмов и ее различные применения. Биоресурс. Технол. 2001, 79, 207–225. [Перекрестная ссылка]

89. Шаллройтер, КУ; Вуд, Дж. В. Возможный механизм действия азелаиновой кислоты на эпидермис человека. Арка Дерматол. Рез. 1990, 282, 168–171. [Перекрестная ссылка]

90. Балина Л.М.; Graupe, K. Лечение меланодермии — 20-процентная азелаиновая кислота против 4-процентного крема с гидрохиноном. Междунар. Дж. Дерматол. 1991, 30, 893–895. [Перекрестная ссылка]

91. Наззаро-Порро, М.; Пасси, С .; Морпурго, Г.; Бретнах А.С. Идентификация ингибиторов тирозиназы в культурах Pityrosporum и их меланоцитотоксическое действие. Пигмент. Ячейка 1979, 4, 234–243.

92. Инь, К.; Чжан, К.; Гао, М. Катализируемый ферментами синтез сукцината витамина Е с использованием химически модифицированного ниона-435. Подбородок. Дж. Хим. англ. 2011, 19, 135–139. [Перекрестная ссылка]

93. Викен, А.Дж.; Гиббенс, Дж. В.; Нокс, К.В. Сравнительные исследования по выделению мембранной липотейхоевой кислоты из фермента Lactobacillus. Дж. Бактериол. 1973, 113, 365–372.

94. Токива, Ю.; Китагава, М .; Раку Т. Ферментативный синтез сложного эфира арбутина ундециленовой кислоты и его ингибирующее действие на тирозиназу грибов. Биотехнолог. лат. 2007, 29, 481–486. [Перекрестная ссылка]

95. Мапари, С.А.; Мейер, А.С.; Трейн, Ю.; Фрисвад, Дж. К. Идентификация потенциально безопасных многообещающих фабрик грибковых клеток для производства поликетидных натуральных пищевых красителей с использованием хемотаксономического обоснования. микроб. Сотовый факт. 2009. [Перекрестная ссылка]

96. Дюфосс, Л. Энциклопедия микробиологии, 3-е изд.; Academic Press: Нью-Йорк, США, 2009; микробные пигменты; стр. 457–471.

97. Бюнгер, Дж.; Дриллер, Х. Эктоин: эффективное натуральное вещество для предотвращения преждевременного фотостарения, вызванного УФ-А. Кожная фармакология. Физиол. 2004, 17, 232–237. [Перекрестная ссылка]

98. Беккер, Дж.; Шафер, Р.; Кольштедт, М.; Сложнее, БиДжей; Борхерт, Н.С.; Стовекен, Н. Системная метаболическая инженерия Corynebacterium glutamicum для производства химического шаперона эктоина. микроб. Сотовый факт. 2013. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

99. Ботта, К.; Ди Джорджио, К.; Сабатье, AS; Де Мео, М. Генотоксичность видимого света (400–800 нм) и оценка фотозащиты секции, L-эрготионеина и маннита и четырех солнцезащитных средств. Дж. Фотохим. Фотобиол. Б. 2008, 91, 24–34. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

100. Пью, С.; Маккенна, Р.; Халлум, И.; Nielsen, DR Engineering Escherichia coli для производства возобновляемого бензилового спирта. Метаб. англ. 2015, 2, 39–45. [Перекрестная ссылка]

101. Ни, Дж.; Тао, Ф .; Ду, Х .; Сюй, П. Имитация естественного пути биосинтеза de novo: производство натурального ванилина из доступных источников углерода. науч. Отчет 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. Ямада, М.; Окада, Ю.; Йошида, Т .; Нагасава, Т. Производство ванилина с использованием клеток Escherichia coli, сверхэкспрессирующих изоэвгенолмонооксигеназу Pseudomonas putida. Биотехнолог. лат. 2008, 30, 665–670. [Перекрестная ссылка]

103. Чжао, Л.-К.; Солнце, З.-Х.; Чжэн, П .; Чжу, Л.-Л. Биотрансформация изоэвгенола в ванилин новым штаммом Bacillus fusiformis. Биотехнолог. лат. 2005, 27, 1505–1509. [Перекрестная ссылка]

104. Равасио, Д.; Вендланд, Дж.; Вальтер, А. Основной вклад пути Эрлиха в производство 2-фенилэтанола/розового ароматизатора у Ashbya gossypii. FEMS Yeast Res. 2014, 14, 833–844. [Перекрестная ссылка]

105. Эйхман, М.М.В.; Шредер, Дж. Водно-органический двухфазный биопроцесс для эффективного производства натуральных ароматических химикатов 2-фенилэтанола и 2-фенилэтилацетата с дрожжами. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2006, 71, 440–443. [Перекрестная ссылка]

106. Уилродт, К.; Дэвид, К.; Корнелиссен, С.; Бюлер, Б.; Джулсинг, МК; Шмид, А. Разработка продуктивности рекомбинантной кишечной палочки для образования лимонена из глицерина в минимальной среде. Биотехнолог. Ж. 2014, 9, 1000–1012. [Перекрестная ссылка]

107. Доблер, Л.; де Карвалью, BR; Алвес, С.; Невес, Британская Колумбия; Фрейре, Г.; Алмейда, Р.В. Повышенная продукция рамнолипидов Pseudomonas aeruginosa со сверхэкспрессией estA в простой среде. PloS ONE 2017, 12, e0183857. [Перекрестная ссылка]

108. Десаи, Д.Д.; Банат И. М. Микробное производство поверхностно-активных веществ и их коммерческий потенциал. микробиол. Мол. биол. 1997 г., стр. 47–64.

109. Кастельбланко-Матис, Л.М.; Барбачано-Торрес, А.; Понсе-Нойола, Т .; Рамос-Вальдивия, AC; Серда Гарсия-Рохас, СМ; Флорес-Ортис, С.М. Продукция каротиноидов и экспрессия генов в мутантном штамме Xanthophyllomyces dendrorhous, избыточно продуцирующем астаксантин. Арка микробиол. 2015, 197, 1129–1139. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

110. Берман, Дж.; Соррилья-Лопес, У.; Фарре, Г.; Чжу, К.; Сандманн, Г.; Твайман, RM; Капелл, Т .; Christou, P. Важные с точки зрения питания каротиноиды как потребительские товары. Фитохим. 2015, 14, 727–743. [Перекрестная ссылка]

111. Энрикес, В.; Эскобар, К.; Галарза, Дж.; Гимпель, Дж. Каротиноиды в микроводорослях. Каротиноиды в природе; Стрэндж, Э., изд.; Springer International Publishing: Нью-Йорк, США, 2016; стр. 219–237.

112. Лау, Н.-С.; Мацуи, М .; Абдулла, АА-А. Цианобактерии: фотоавтотрофные микробные фабрики для устойчивого синтеза промышленных продуктов. Дж. Биомед. Биотехнолог. 2015, 2, 1–9. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

113. Дас, А.; Юн, С.Х.; Ли, СХ; Ким, JY; О, ДК; Ким, С.В. Обновленная информация о микробном производстве каротиноидов: применение последних инструментов метаболической инженерии. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2007, 77, 505–512. [Перекрестная ссылка]

114. Мата-Гомез, Л.С.; Монтанес, Дж. К.; Мендес-Завала, А.; Агилар, К.Н. Биотехнологическое производство каротиноидов дрожжами: обзор. микроб. Сотовый факт. 2014. [Перекрестная ссылка]

115. Лю, Дж.; Ван, X .; Пу, Х .; Лю, С .; Кан, Дж.; Джин, К. Последние достижения в области эндофитных экзополисахаридов: производство, структурная характеристика, физиологическая роль и биологическая активность. углевод. Полим. 2017, 157, 1113–1124. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

116. Лю Ф.; Оои, В.Е.; Чанг, С.Т. Активность экстрактов полисахаридов грибов по удалению свободных радикалов. Жизнь наук. 1997, 60, 763–771. [Перекрестная ссылка]

117. Джин М.; Кай, YX; Ли, младший; Чжао, Х. 1,10-фенантролин-Fe2 плюс окислительный анализ гидроксильного радикала, полученного с помощью H2O2/Fe. прог. Биохим. Биофиз. 1996, 23, 553–555.

118. Чен, Б.; Вы, В .; Хуанг, Дж.; Ю, Ю .; Чен В. Выделение и антиоксидантные свойства внеклеточного полисахарида Rhodella reticulata. Мировой Дж. Микробиол. Биотехнолог. 2010, 26, 833–840. [Перекрестная ссылка]

119. Цирулис, Дж. Т.; Скотт, Дж. А.; Росс, Г. М. Борьба с окислительным стрессом микроводорослями. Может. Дж. Физиол. Фармакол. 2013, 91, 15–21. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

120. Хассан, Х.М. Цитотоксичность оксирадикалов и эволюция супероксиддисмутазы. В кислороде, экспрессии генов и клеточной функции; Массаро, Д., Клерч, Л., ред.; Марсель Деккер: Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США, 1997.

121. Бруно-Барсена, Дж.М.; Азкарате-Перил, Массачусетс; Хассан, Х. М. Роль антиоксидантных ферментов в устойчивости бактерий к органическим кислотам. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2010, 76, 2747–2753. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

122. Рахман, К. Исследования свободных радикалов, антиоксидантов и сопутствующих факторов. клин. Интерв. Старение 2007 г., 2, 219–236.

123. Эббот, Д.А.; Шур, Э .; Дуонг, штат Джорджия; де Халстер, Э.; Пронк, Дж. Т.; van Maris, AJ Сверхэкспрессия каталазы снижает индуцированный молочной кислотой окислительный стресс у Saccharomyces cerevisiae. заявл. Окружающая среда. микробиол. 2009, 75, 2320–2325. [Перекрестная ссылка]

124. Шао, Н.; Бек, CF; Лемер, SD; Кригер-Лишкай, А. Фотосинтезирующий электрон влияет на передачу сигналов H2O2 путем инактивации каталазы у Chlamydomonas reinhardtii. Планта 2008, 228, 1055–1066. [Перекрестная ссылка]

125. Европейская комиссия. Запрет на испытания на животных. Доступно в Интернете: https://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/animal-testing_en (по состоянию на 14 апреля 2019 г.).

126. Гао, К.; Гарсия-Пишель, Ф. Микробные ультрафиолетовые солнцезащитные кремы. Нац. Преподобный Микробиолог. 2011, 9, 791–802. [Перекрестная ссылка]

127. Плонка П.М.; Грабацка, М. Синтез меланина в микроорганизмах – биотехнологические и медицинские аспекты. Акта Биохим. пол. 2006, 53, 429–443.

128. Носанчук Ю.Д.; Старк, RE; Casadevall, A. Грибковый меланин: что мы знаем о структуре? Передний. микробиол. 2015. [Перекрестная ссылка]

129. Сансинея, Э.; Ортис, А. Меланин: фотозащита биопестицидов на основе Bacillus thuringiensis. Биотехнолог. лат. 2015, 37, 483–490. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

130. Мацуи, К.; Назифифи, Э.; Хираи, Ю.; Вада, Н.; Мацуго, С .; Сакамото, Т. Цианобактериальный поглощающий УФ-излучение пигмент сцитонемин проявляет активность по удалению радикалов. J. Генерал Appl. микробиол. 2012, 58, 137–144. [Перекрестная ссылка]

131. Гарсия-Пишель, Ф.; Шерри, Северная Дакота; Castenholz, RW Доказательства роли внеклеточного пигмента сцитонемина в ультрафиолетовом солнцезащитном факторе у наземных цианобактерий Chlorogloeopsis sp. Фотохим. Фотобиол. 1992, 56, 17–23. [Перекрестная ссылка]

132. Растоги, Р.П.; Сонани, РР; Мадамвар, Д. Цианобактериальный солнцезащитный крем сцитонемин: роль в фотозащите и биомедицинских исследованиях. заявл. Биохим. Биотехнолог. 2015, 176, 1551–1563. [Перекрестная ссылка]

133. Даршан, Н.; Manonmani, HK Prodigiosin и его возможные применения. Дж. Пищевая наука. Технол. 2015, 52, 5393–5407. [Перекрестная ссылка]

134. Дюран, Н.; Хусто, ГЗ; Дюран, М.; Брокки, М.; Корди, Л.; Тасич, Л. Достижения в области Chromobacterium violaceum и свойства виолацеина — его основного вторичного метаболита: обзор. Биотехнолог. Доп. 2016, 34, 1030–1045. [Перекрестная ссылка]

135. Колабелла Ф.; Молин, М .; Либкинд, Д. УФ-солнцезащитные средства микробного происхождения: циклоспорин и микоспориноподобные аминокислоты. Недавний Пэт. Биотехнолог. 2014, 8, 179–193. [Перекрестная ссылка]

136. Хосрави, С.; Ходабанде, С .; Агх, Н.; Бахтиарян М. Влияние солености и ультрафиолетового излучения на биоаккумуляцию микоспориноподобных аминокислот в артемии из озера Урмия (Иран). Фотохим. Фотобиол. 2013, 89, 400–405. [Перекрестная ссылка]

137. Горбушина А.А.; Уайтхед, К.; Дорниден, Т .; Ниссе, А .; Шульте, А .; Hedges, JI Колонии черных грибов как единицы выживания: гифальный циклоспорин, синтезированный обитающими в скалах микроколониальными грибами. Может. Дж. Бот. 2003, 81, 131–138. [Перекрестная ссылка]

138. Гиллбро, Дж. М.; Олссон, М.Дж. Меланогенез и механизмы осветляющих кожу агентов – существующие и новые подходы. Междунар. Дж. Космет. науч. 2011, 33, 210–221. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

139. Смит, Н.; Виланова, Дж.; Павел С. В поисках натуральных средств для отбеливания кожи. Междунар. Дж. Мол. науч. 2009, 10, 5326–5349. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

140. Пиллаяр, Т.; Маникам, М .; Namasivayam, V. Агенты для отбеливания кожи: перспективы медицинской химии ингибиторов тирозиназы. J. Энзим Ингиб Мед. хим. 2017, 32, 403–425. [Перекрестная ссылка]

141. Пиллаяр, Т.; Намасиваям, В .; Маникам, М .; Юнг, SH Ингибиторы меланогенеза: обновленный обзор. Дж. Мед. хим. 2018, 61, 7395–7418. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

142. Ха, Т.Дж.; Ян, MS; Ян, Д.С.; Чоу, SU; Park, GH Ингибирующая активность производных флаванона, выделенных из Sophora flavecens, в отношении меланогенеза. Бык. Корейский хим. соц. 2001, 22, 97–99.

143. Парвез, С.; Канг, М .; Чанг, ХС; Чо, К.; Хонг, MC; Шин, М.К. Обзор и механизм действия депигментирующих и осветляющих кожу средств. Фитотер. Рез. 2006, 20, 921–934. [Перекрестная ссылка]

144. Росфаризан, М.; Мохд, С.М.; Нурашикин С.; Мадиха, MS; Арбакария, Б.А. Койевая кислота: Применение и разработка процесса ферментации для производства. Биотех. Мол. биол. 2010, 5, 24–37.

145. Ортис-Руис, резюме; Берна, Дж.; Тудела, Дж.; Варон, Р.; Гарсия-Кановас, Ф. Действие эллаговой кислоты на пути биосинтеза меланина. Дж. Дерматол. науч. 2010, 5, 24–37. [Перекрестная ссылка]

146. Вентура, Дж.; Белмарес, Р .; Агилера-Карбо, А .; Гутьеррес-Санчес, Г.; Родригес-Эррера, Р. Грибковая биодеградация дубильных веществ креозотового куста (Larrea tridentata) и дегтярного куста (Fluorensia cernua) для производства галловой и эллаговой кислот. Пищевая Технол. Биотехнолог. 2008, 46, 213–217.

147. Сепульведа, Л.; Аскацио, А .; Родригес-Эррера, Р.; Агилера-Карбу, А.; Агилар, К.Н. Эллаговая кислота: биологические свойства и разработка биотехнологий для производственных процессов. фр. Дж. Биотехнология. 2011, 10, 4518–4523.

148. Дыхание, AC; Наззаро-Порро, М.; Пасси, С .; Зина Г. Терапия азелаиновой кислотой при нарушениях пигментации. клин. Дерматол. 1989, 7, 106–119. [Перекрестная ссылка]

149. Зибер, Массачусетс; Гегель, Дж. К. Азелаиновая кислота: свойства и механизм действия. Кожная фармакология. Физиол. 2014, 27, 9–17. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

150. Breathnach, AS Меланиновая гиперпигментация кожи: меланодермия, местное лечение азелаиновой кислотой и другие методы лечения. Кутис 1989, 7, 106–119.

151. Усуки, А.; Охаси, А .; Сато, Х .; Очиай, Ю.; Ичихаши, М .; Фунасака Ю. Ингибирующее действие гликолевой и молочной кислот на синтез меланина в клетках меланомы. Эксп. Дерматол. 2003, 12, 43–50. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

152. Чжан З.Я.; Джин, Б.; Келли, Дж. М. Производство молочной кислоты из возобновляемых материалов грибами Rhizopus. Биохим. англ. Дж. 2007, 35, 251–263. [Перекрестная ссылка]

153. Лю, Х.; Лю, Ф .; Лю, С .; Ли, Х .; Линг, П.; Zhu, X. Полигамма-глутамат из Bacillus subtilis ингибирует активность тирозиназы и меланогенез. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2013, 97, 9801–9809. [Перекрестная ссылка]

154. Мохорчич, М.; Фридрих, Дж.; Ренимель, И.; Андре, П .; Мандин, Д.; Шомон, Ж.-П. Получение меланинового отбеливающего фермента грибкового происхождения и его применение в косметике. Биотехнолог. Биопроцесс. англ. 2007, 12, 200–206. [Перекрестная ссылка]

155. Антонопулу, И.; Варриале, С.; Топакас, Э.; Рова, У .; Кристакопулос, П.; Фарако, В. Ферментативный синтез биоактивных соединений с высоким потенциалом для применения в космецевтике. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2016, 100, 6519–6543. [Перекрестная ссылка]

156. Сугимото, К.; Номура, К.; Нисимура, Т .; Кисо, Т .; Сугимото, К.; Курики, Т. Синтезы альфа-арбутин-альфа-гликозидов и их ингибирующее действие на тирозиназу человека. Дж. Биоци. биоинж. 2005, 99, 272–276. [Перекрестная ссылка]

157. Сехон Рандхава, KK; Рахман, П.К. Рамнолипидные биосурфактанты: прошлый, настоящий и будущий сценарий мирового рынка. Передний. микробиол. 2014. [Перекрестная ссылка]

158. Маршан Р.; Банат, И. М. Биосурфактанты: устойчивая замена химическим поверхностно-активным веществам? Биотехнолог. лат. 2012, 34, 1597–1605. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

159. Ланг, С.; Вулбрандт, Д. Липиды рамнозы - биосинтез, микробное производство и потенциал применения. заявл. микробиол. Биотехнолог. 1999, 51, 22–32. [Перекрестная ссылка]

160. Хаба, Э.; Пиназо, А .; Хореги, О .; Эспуни, МДж; Инфанте, МР; Манреса А. Физико-химическая характеристика и антимикробные свойства рамнолипидов, продуцируемых Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044. Биотехнология. биоинж. 2003, 81, 316–322. [Перекрестная ссылка]

161. Пиляц Г.; Пиляк, Т. Использование рамнолипидов для заживления ран, лечения ожогового шока, атеросклероза, трансплантации органов, депрессии, шизофрении и косметики. Патент США № US7262171B1. 2000.

162. Тули, Г.С.; Чаудхари, П.; Бенивал, В.; Шарма, А.К. Микробные пигменты как природные источники цвета: современные тенденции и перспективы на будущее. Дж. Пищевая наука. Тех. 2015, 52, 4669–4678. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

163. Каро, Ю.; Венкатачалам, М .; Лебо, Дж.; Фуйо, М.; Дюфосс, Л. Пигменты и красители из нитчатых грибов. Грибковый метаб. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Соуза, ПН; Григолетто, ТЛ; Абреу, Л.М.; Гимарайнш, LH; Сантос, К.; Гальвао, ЛР; Cardoso, PG Получение и химическая характеристика пигментов нитчатых грибов. Микробиология 2016, 162, 12–22.

165. Рао, Н.; Прабху, М.; Сяо, М .; Li, WJ Грибковые и бактериальные пигменты: вторичные метаболиты с широким применением. Передний. микробиол. 2017. [Перекрестная ссылка]

166. Куддус, М.; Сингх, П.; Томас, Г.; Аль-Хазими, А. Последние разработки в области производства и биотехнологических применений С-фикоцианина. Биомед. Рез. Междунар. 2013. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

167. Николетти, М. Нутрицевтики из микроводорослей. Foods 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Граверхольт, О.С.; Эриксен, Н.Т. Гетеротрофные культуры Galdieria sulphuraria с высокой плотностью клеток с подпиткой периодического и непрерывного действия и производство фикоцианина. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2007, 77, 69–75. [Перекрестная ссылка]

169. Кэрролл, А.Л.; Десаи, С.Х.; Ацуми, С. Микробное производство ароматических и вкусовых соединений. Курс. мнение хим. биол. 2016, 37, 8–15. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

170. Лонго, Массачусетс; Санроман, М.А. Производство пищевых ароматических соединений: микробные и ферментативные методики. Пищевая Технол. Биотехнолог. 2006, 44, 335–353.

171. Кемпф, Б.; Бремер, Э. Поглощение и синтез совместимых растворенных веществ как реакция микробного стресса на среду с высокой осмоляльностью. Арка микробиол. 1998, 170, 319–330. [Перекрестная ссылка]

172. Соккол, ЧР; Медейрос, AB; Ванденберге, Л.П.; Войцеховский, А.Л. Вкусовые соединения, продуцируемые грибами, дрожжами и бактериями. Ручная работа Пищевая прод. Произв. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Биоароматы и ароматизаторы с помощью грибов и их ферментов. Грибные водолазы. 2003, 13, 153–166.

174. Каррау, Ф.; Бойдо, Э.; Деллакасса, Э. Разнообразие дрожжей и вкусовые соединения. В метаболитах грибов; Мериллон, Дж. М., Рамават, К., ред.; Springer International Publishing: Чам, Швейцария, 2016 г.; стр. 1–29.

175. Приферт, Х.; Рабенхорст, Дж.; Штайнбюхель, А. Биотехнологическое производство ванилина. заявл. микробиол. Биотехнолог. 2001, 56, 296–314. [Перекрестная ссылка]

176. Кунджапур, А.М.; Тарасова, Ю.; Prather, KLJ Синтез и накопление ароматических альдегидов в сконструированном штамме Escherichia coli. Варенье. хим. соц. 2014, 136, 11644–11654. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

177. Алонсо-Гутьеррес, Дж.; Чан, Р .; Бат, ТС; Адамс, PD; Кислинг, JD; Петцольд, С. Дж. Метаболическая инженерия кишечной палочки для производства лимонена и периллилового спирта. Метаб. англ. 2013, 19, 33–41. [Перекрестная ссылка]

178. Окино, Т.; Ци, С .; Мацуда, Х .; Мураками, М .; Ямагучи, К. Ностопептины А и В, ингибиторы эластазы из цианобактерии Nostoc minutum. Дж. Нат. Произв. 1997, 60, 158–161. [Перекрестная ссылка]

179. Георгусаки, К.; ДеПедро, Н.; Шиншилла, А .; Алиаяннис, Н .; Висенте, Ф .; де Кастро, П.; Фотинос, С.; Жениллуд, О .; Фокиалакис, Н. Высокопроизводительный скрининг микробного биоразнообразия для открытия новых космецевтических агентов. Панта Мед. 2015. [Перекрестная ссылка]

180. Георгусаки, К.; Цафантакис, Н .; Чеилари, А .; Гумени, С .; Гонсалес, И.; Гонсалес, В.; Хосе, РТ; Жениллуд, О .; Фотинос, С.; Тругакос, И.; и другие. Открытие новых космецевтических средств из эндофитных микроорганизмов испанского биоразнообразия. Планта Мед. 2017. [Перекрестная ссылка]

181. Сикиотис, Г.П.; Бохманн, Д. Стресс-активируемые факторы транскрипции cap'n'collar при старении и заболеваниях человека. науч. Сигнал. 2010. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

182. Ведель, С.; Манола, М.; Кавинато, М.; Тругакос, ИП; Янсен-Дурр, П. Ориентация на механизмы контроля качества белка с помощью натуральных продуктов для содействия здоровому старению. Молекулы 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Моримото, Род-Айленд; Куэрво, А. М. Протеостаз и протеом старения в норме и при болезни. Дж. Геронтол. биол. науч. Мед. науч. 2014. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

184. Хуанг, Л.; Chen, CH Регуляторы протеасом: активаторы и ингибиторы. Курс. Мед. хим. 2009, 16, 931–939. [Перекрестная ссылка]

185. Пейра, Лос-Анджелес; Эпарвье, В.; Эйду, К.; Гиллемо, Дж. К.; Литаудон, М .; Стиен, Д. Бетулиновая кислота, первый тритерпеноид люпинового типа, выделенный как из Phomopsis sp. и его растение-хозяин Diospyros carbonara Benoist. хим. Биодайверы. 2017. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

Для получения дополнительной информации: david.deng@wecistanche.com WhatsApp:86 13632399501