Абстрактный

Фон:Агрегация тромбоцитов и конечные продукты усиленного гликирования (AGE) и окислительный стресс известны как ключевые факторы развития сердечно-сосудистых заболеваний и диабетических осложнений. В этом контексте потребление фруктов и овощей, являющихся хорошими источниками антиоксидантных соединений, в значительной степени считается эффективным способом профилактики этих заболеваний у людей. Настоящее исследование посвящено оценке антиоксидантной, антитромбоцитарной и антигликирующей активности цветков граната (Punica granatum L.) (PF), листьев (PL), кожуры (PP), сока (PJ) и масла семян (PSO). .

Гликозид цистанхе также может повышать активность СОД в тканях сердца и печени и значительно снижать содержание липофусцина и МДА в каждой ткани, эффективно удаляя различные активные кислородные радикалы (ОН-, Н₂О₂ и др.) и защищая от повреждения ДНК, вызванного ОН-радикалами. Цистанхефенилэтаноидные гликозиды обладают сильной акцепторной способностью свободных радикалов, более высокой восстановительной способностью, чем витамин С, улучшают активность СОД в суспензии сперматозоидов, снижают содержание МДА и оказывают определенное защитное действие на функцию мембран сперматозоидов. Полисахариды цистанхе способны усиливать активность СОД и GSH-Px в эритроцитах и ​​тканях легких экспериментально стареющих мышей, вызванную D-галактозой, а также снижать содержание МДА и коллагена в легких и плазме, повышать содержание эластина, хороший очищающий эффект на DPPH, продлевает время гипоксии у стареющих мышей, улучшает активность SOD в сыворотке и задерживает физиологическую дегенерацию легких у экспериментально стареющих мышей Эксперименты с клеточной морфологической дегенерацией показали, что Cistanche обладает хорошей антиоксидантной способностью и потенциально может стать лекарством для профилактики и лечения заболеваний кожи, вызывающих старение. В то же время эхинакозид в цистанхе обладает значительной способностью улавливать свободные радикалы DPPH и может улавливать активные формы кислорода, предотвращать вызванную свободными радикалами деградацию коллагена, а также оказывает хорошее восстанавливающее действие на повреждение анионов свободных радикалов тимина.

Нажмите на Цистанче и Тонгкат Али Reddit

【Для получения дополнительной информации: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Методы: Антиоксидантную активность измеряли в отношении радикала ABTS и перекисного окисления липидов. Антигликационную активность определяли по формированию интенсивности флуоресценции КПГ в системе БСА/рибоза. Антитромбоцитарную активность измеряли в обогащенной тромбоцитами плазме (PRP) в отношении аденозиндифосфата (АДФ), коллагена и арахидоновой кислоты (АК).

Полученные результаты:Экстракт PF показал самую высокую антиоксидантную активность в отношении ABTS и перекисного окисления липидов со значениями IC50 0,7 мг/мл и 0,63 мг/мл соответственно. Что касается антигликирующей активности, PP, PF и PL умеренно ингибировали образование пентозидин-подобных AGE по сравнению с положительными контролями со значением AGE-IC50 0,4 мг/мл. PJ и PSO не имеют антивозрастного эффекта. Все экстракты дозозависимо избирательно ингибировали агрегацию тромбоцитов, вызванную одним, двумя или тремя индукторами. PF был самым мощным ингибитором, вызванным всеми тремя индукторами, с ингибирующим эффектом в диапазоне от 35,6 до 66,6%. PP и PJ проявляли антитромбоцитарный эффект как в отношении АДФ, так и в отношении коллагена, а PL и PSO — только в отношении AA.

Выводы:Эти результаты свидетельствуют о том, что некоторые экстракты граната обладают потенциальной антигликирующей и антитромбоцитарной активностью in vitro.

Ключевые слова:Гранат, антитромбоцитарная активность, конечные продукты усиленного гликирования, окислительный стресс, перекисное окисление липидов

Фон

Гранат (Punica granatum L.) широко известен как очень мощный антиоксидантный фрукт [1–3]. Сообщалось, что антиоксидантная способность гранатового сока в 3-раз выше, чем у красного вина или зеленого чая [4], и в 8-раз выше, чем в апельсиновом соке [5]. Кроме того, одним из натуральных фруктов, который находится в стадии многочисленных исследований, является гранат и его составляющие, которые, как сообщается, обладают сильной биологической активностью и лечебной ценностью. Было описано, что гранатовый сок, кожура, масло семян, листья и экстракты цветов обладают как in vitro, так и in vivo противодиабетическим [6], противовоспалительным [7], антиоксидантным, против ожирения [8] и противоопухолевым действием. 9]. Эти полезные эффекты связаны с наличием очень высоких уровней антиоксидантов, таких как полифенольные соединения, включая гидролизуемые дубильные вещества, антоцианы и флавонолы [10]. В наших предыдущих исследованиях антидиабетических эффектов граната результаты подчеркивают нейропротекторные эффекты экстрактов граната и демонстрируют, что долгосрочное потребление граната может быть потенциальной альтернативной стратегией для предотвращения HFD (диета с высоким содержанием жиров и фруктозы), индуцированная инсулином. резистентность и окислительный стресс [6, 11]. Потребление гранатового сока, листьев и кожуры привело к значительному снижению уровня глюкозы в плазме натощак и уровня инсулина. Следовательно, гомеостатический индекс резистентности к инсулину (HOMA-IR), который используется для количественной оценки резистентности к инсулину, был соответственно снижен, что свидетельствует о значительном улучшении чувствительности к инсулину.

В этом контексте мы попытались оценить влияние экстрактов граната на наиболее известные осложнения диабета, такие как агрегация тромбоцитов и конечные продукты повышенного гликирования (AGE), которые, как сообщается, коррелируют с прогрессированием диабета и старением [12, 13]. . Ингибирование функции тромбоцитов уже давно принято в качестве стратегии лечения острых сосудистых атеротромботических заболеваний, таких как диабет, сердечно-сосудистые заболевания и ишемический инсульт [14, 15]. Конечные продукты повышенного гликирования (AGE) связаны с повышенным риском диабетических осложнений, таких как диабетическая ретинопатия, невропатия и нефропатия [16]. Кроме того, было опубликовано несколько сообщений об ингибирующем влиянии различных частей гранатового дерева на образование КПГ [17] или агрегацию тромбоцитов [18]. В этой работе мы исследовали in vitro антивозрастные и антиагрегантные свойства, а также некоторую антиоксидантную активность гранатового сока (PJ), кожуры (PP), цветов (PF), листьев (PL) и масла семян (PSO).

Методы

Растительное сырье и экстракция

Листья и плоды были собраны с гранатовых деревьев тунси в октябре 2021 года в регионе Махдия, Тунис. Подлинность сорта была подтверждена систематиком д-ром Фатен Зауай из Департамента садоводства Высшего агрономического института Шотт-Мерем (Университет Суса, Тунис), а ваучерный образец был депонирован в нашей национальной коллекции, хранящейся в двух экземплярах в Габесе и Шот-Мариеме. (Сус), с кодом «TN1, TN2, TN3, TN5, TN5».

Экстракты граната готовили, как описано в нашем предыдущем исследовании [11]. Фрукты моют и чистят вручную. Арилы прессовали с помощью коммерческого блендера (Moulinex, Франция). Отжатый сок центрифугировали при 15000 об/мин в течение 15 мин. Затем супернатант рекуперировали и лиофилизировали. Листья, цветки и кожуру плодов сушили, измельчали ​​в порошок и экстрагировали метанолом (MeOH) 50 г/250 мл в темноте в течение 48 часов. Каждый экстракт фильтровали через фильтровальную бумагу Whatman № 42 и выпаривали досуха с использованием роторного испарителя (Heidolph, Германия) в вакууме при 45° и хранили при -20° для дальнейшего определения. Семена граната высушивали и измельчали. Нефть экстрагировали методом Сокслета. Около 30 г семян экстрагировали 200 мл гексана при комнатной температуре в течение 6 часов. Растворитель удаляли выпариванием при 40°, масло продували потоком азота и хранили при -20° в запаянных пробирках.

Анализ удаления радикалов ABTS

Антиоксидантная способность экстрактов граната с помощью анализа ABTS (2,2'-казино-бис (3-этилбензотиазолин-6-сульфоновая кислота) измерялась с использованием предыдущего метода [19]. Вкратце, ABTS• плюс радикал раствор получали реакцией исходного раствора ABTS (5 мМ) с раствором персульфата калия (K2S2O8) (2,7 мМ).Для оценки антиоксидантной способности раствор ABTS• plus разбавляли фосфатным буфером (20 мМ, pH 7,4) с получением поглощения 0,700±0,020 при 660 нм. Десять, раствор ABTS• plus смешивали с экстрактами граната, приготовленными в различных концентрациях. После инкубации измеряли поглощение при 734 нм. Использовали аскорбиновую кислоту. в качестве положительного контроля Процент ингибирования ABTS• плюс радикал рассчитывали по следующей формуле:

Контроль относится к раствору, содержащему чистый МеОН вместо образца, а образец относится к абсорбции растворов, содержащих экстракт граната. Была определена эффективная концентрация образца, необходимая для снижения поглощения ABTS• plus на 50 процентов (EC50).

Перекисное окисление липидов методом тиоцианата железа

Ингибирование перекисного окисления липидов экстрактами граната оценивали в соответствии с предыдущей процедурой [20]. В качестве липидной матрицы использовали линолевую кислоту (ЛК), а в качестве инициатора свободных радикалов использовали 2,2'-азобис(2-метилпропионамидин)дигидрохлорид (ААРН). Были приготовлены различные концентрации каждого экстракта граната. Каждую концентрацию смешивали с 1,3% (масс./об.) метанольной LA и 0.2M фосфатного буфера (pH 7,0), и инициировали перекисное окисление добавлением раствора AAPH (55,3 мМ) в фосфатном буфере. Контрольный раствор готовили, добавляя чистый МеОН вместо образца. После инкубации при 50°С в течение 24 ч в темноте реакционную смесь растворяли в растворе 3:1 (об./об.) H2O–MeOH. Десять, добавляли 10-процентный водный раствор NH4SCN и 20 мМ FeCl2 в 3,5-процентной HCl. После 3-минутной инкубации при комнатной температуре измеряли оптическую плотность при 546 нм относительно соответствующего бланка. В качестве положительного контроля использовали аскорбиновую кислоту. Результаты выражены в процентах ингибирования перекисного окисления липидов:

Аконтрольотносится к раствору, содержащему чистый МеОН вместо образца, а образец относится к абсорбции растворов, содержащих масло. Определяли Te EC50.

Усовершенствованный анализ ингибирования конечных продуктов гликирования

Ингибирование образования пентозидин-подобных AGE и значения EC50 определяли и рассчитывали с использованием ранее описанного метода Séro et al. 2013, с небольшими изменениями [21]. Вкратце, BSA (10 мг/мл) инкубировали с D-рибозой (0,5 М) вместе с тестируемым экстрактом в 50 мМ фосфатном буфере при рН 7,4 (NaN3, 0,02%). Растворы инкубировали в 96-луночных микротитровальных планшетах при 37° в течение 24 часов в закрытой системе перед измерением флуоресценции AGE. Для каждого измерения вычитали флуоресценцию, возникающую в результате инкубации, в том же самом BSA (10 мг/мл) и в тестируемых условиях экстракта. Флуоресценцию пентозидиноподобных (λexc 335 нм, λem 385 нм) AGE измеряли с помощью спектрофлуориметра для микропланшетов. Процент образования КПГ рассчитывали следующим образом для каждой концентрации экстракта и определяли значения EC50:

AGEs (проценты)=[интенсивность флуоресценции (образец) − интенсивность флуоресценции (пустой образец)] *100/[интенсивность флуоресценции (контроль) − интенсивность флуоресценции (контрольный бланк)]

In vitro оценка антиагрегационной активности тромбоцитов

Свежая кровь была получена от здоровых добровольцев с отрицательным анамнезом употребления лекарств, напитков или пищевых продуктов, которые могут повлиять на агрегацию, в течение по крайней мере 10 дней и предпочтительно должны были голодать в течение ночи, поскольку присутствие хиломикронов также может нарушать модели агрегации. Исследование было одобрено локальным комитетом по этике университетской больницы Hedi Chaker в Сфаксе, Тунис.

Венозную кровь собирали в пластиковую пробирку, содержащую 109 мМ тринатрийцитрата. PRP получали центрифугированием при комнатной температуре в течение 12 мин при 200×g. PRP осторожно удаляли, избегая загрязнения эритроцитами или лейкоцитарной пленкой, и хранили при комнатной температуре до тестирования. Все тесты должны быть завершены в течение 3 часов после подготовки PRP. Затем оставшуюся кровь центрифугировали при 2000×g в течение 20 минут для получения обедненной тромбоцитами плазмы (PPP). Мы использовали скрининговую панель агрегирующих агентов: аденозин-5'-дифосфат (АДФ, 20 мкМ), коллаген (5 мкг/мл) и арахидоновую кислоту (2 мМ).

PRP и PPP использовались для установки, соответственно, 0 и 100-процентного светопропускания в агрегометре. Агрегацию тромбоцитов контролировали в течение не менее 5 минут после добавления агониста.

Для экстрактов листьев граната (PL), цветков (PF), сока (PJ) и кожуры (PP) были приготовлены различные концентрации для каждого экстракта, растворенного в ДМСО (конечная конечная концентрация {{0}},05 %. концентрация). Для PSO различные концентрации растворяли в 70-процентном полиэтиленгликоле (PEG), который является широко используемым растворителем in vivo для растворения нерастворимых в воде соединений. Десять микролитров каждого экстракта добавляли к 260 мкл контрольного PRP, а затем смесь инкубировали не менее 5 минут (до 30 минут) при 37°C перед добавлением агонистов. Добавляли десять коллагенов (5 мкг/мл), АК (2 мМ) или АДФ (20 мкмоль/л) и отслеживали изменение формы и агрегацию тромбоцитов в течение 5 минут. ДМСО (0,5% об./об.) использовали в качестве отрицательного контроля, а аспирин использовали в качестве положительного контроля.

D=агрегация тромбоцитов в присутствии тестируемых соединений

S=агрегация тромбоцитов в присутствии растворителя.

Активность по ингибированию агрегации тромбоцитов выражали в виде процента ингибирования по сравнению с активностью, измеренной для одного носителя (ДМСО или ПЭГ). Каждый образец измеряли в трех экземплярах, и данные представлены как среднее значение ± стандартное отклонение. Значения эффективных концентраций, необходимых для 50-процентного ингибирования агрегации тромбоцитов (EC50), получали по меньшей мере из трех определений.

статистический анализ

Результаты выражали как среднее значение не менее трех независимых измерений, если только не сообщалось о стандартных отклонениях (среднее значение ± стандартное отклонение) и не анализировалось с использованием SPSS ver. 21.0, профессиональное издание. Для антиоксидантной активности использовали критерий Дункана для оценки значимости основных эффектов на 5-процентном уровне вероятности (P<0.05).

Результаты и обсуждение

Антиоксидантные свойства экстрактов граната

Антиоксидантные свойства экстрактов граната измеряли с помощью анализов ABTS и перекисного окисления липидов. Результаты были суммированы в таблице 1 и выражены в виде значения EC50. Более низкая EC5{{10}} указывала на более высокую антиоксидантную активность. Было обнаружено, что экстракты отличаются друг от друга по своему антиоксидантному действию. Например, PF показал самую высокую антиоксидантную активность в отношении ABTS со значениями EC50 0,7 мг/мл, превосходя даже стандартную аскорбиновую кислоту, которая имела IC50 1,4 мг/мл. PF показал второе самое низкое значение EC50 для анализа перекисного окисления липидов (0,63 мг/мл), немного выше, чем стандартная аскорбиновая кислота (0,52 мг/мл), однако эта разница не была статистически значимой (p <0,05). Экстракт PP, за которым следуют экстракты PL и PJ, может эффективно уменьшить количество свободных радикалов ABTS. Тот же порядок был обнаружен в тестах перекисного окисления липидов. Однако PSO продемонстрировал самую слабую антиоксидантную активность в обоих анализах in vitro. Сообщается, что существует установленная связь между содержанием фенолов и антиоксидантной способностью [22]. В нашем предыдущем исследовании [23] мы изучали содержание фенолов в цветках, листьях, кожуре и соке граната и сравнивали их восстанавливающую способность и анти-DPPH активность. Результаты показывают, что все органы обладали также эффективной восстановительной способностью и антирадикальной активностью. Цветы и листья были богаче фенолами и оказались сильнейшими антиоксидантами.

Противовозрастные свойства экстрактов граната

The anti-glycation capacities of pomegranate extracts evaluated by their inhibition of the formation of global fluorescent AGEs in the BSA/ribose system are depicted in Fig. 1 and Table 2. PP, PF, and PL extracts demonstrated a dose-response inhibition of the pentosidine-like AGEs formation (Fig. 1) with an AGE-EC50 value of 0.4mg/ml  (Table 2). This anti-AGEs capacity is considered moderate compared to that exhibited by Aminoguanidine (AGEEC50; 0.16-0.17mg/mL) and weak compared to Rutoside trihydrate (AGE-EC50; 0.05mg/mL). However, results show that PJ and PSO haven't any anti-AGE effect (AGEEC50; >1 мг/мл). В двойном слепом исследовании Sohrab (2015) пришел к выводу, что сок граната (Punica granatum) снижает перекисное окисление липидов, но не влияет на конечные продукты гликирования в плазме у взрослых с диабетом 2 типа [24]. Наши результаты, касающиеся гранатового сока, не согласуются с некоторыми прошлыми выводами, о которых сообщил Лю (2014), который обнаружил, что экстракт плодов граната (PFE) показал мощную антигликационную активность [25]. Антигликационная активность различных экстрактов граната может быть связана с их фенольными составляющими. Kumagai (2015) показал, что образование КПГ, полученных из БСА с глюкозой, фруктозой и глицеральдегидом in vitro, в зависимости от концентрации подавлялось добавлением экстракта плодов граната PFE и его фенольных компонентов, таких как пуникалин, пуникалагин, эллаговая кислота и галловая кислота. кислота [17].

Антитромбоцитарная активность экстрактов граната

Части граната оценивали на их способность ингибировать агрегацию тромбоцитов PRP человека, индуцированную АДФ, коллагеном и АК в качестве мощных индукторов агрегации. В таблице 3 показано ингибирующее действие различных экстрактов в различных концентрациях и аспирина в качестве положительного контроля, а в таблице 4 приведены значения ЕС50 экстрактов или соединений граната со средними значениями трех измерений. Все экстракты дозозависимо избирательно ингибировали агрегацию тромбоцитов, вызванную одним, двумя или тремя индукторами.

Было обнаружено, что экстракт цветков является наиболее мощным ингибитором агрегации тромбоцитов, вызванной всеми тремя индукторами, с ингибирующим эффектом в диапазоне от 35,6 до 66,6% при 3,5 мг/мл. Он был активен против индуцированной коллагеном агрегации тромбоцитов со значением EC50 2,8 мг/мл, а затем против агрегации тромбоцитов, индуцированной АК, со значением EC50 3,85 мг/мл и с 4.{ {15}} мг/мл, когда агрегацию стимулировали АДФ. По сравнению с аспирином в качестве положительного контроля, PF, PP и PJ обладают ингибирующим действием против агрегации, вызванной коллагеном. Тем не менее, аспирин ингибировал агрегацию, индуцированную АК и АДФ, с ЕС50 0,42 и 0,66 мг/мл соответственно, но никакого эффекта в отношении коллагена обнаружено не было. В этом исследовании и нашем предыдущем исследовании [23] было обнаружено, что PF является наиболее антиоксидантной частью граната против радикала DPPH, радикала ABTS и перекисного окисления липидов по сравнению с PP, PL и PJ. Это открытие может объяснить, почему PF был лучшим ингибитором агрегации тромбоцитов. Кроме того, ПФ богат фенолами (16,6%), в том числе в основном гидролизованными дубильными веществами (эллагитаннин) и растворимыми пищевыми волокнами (30,2%) [26]. Ранее было показано, что гидролизованные танины очень эффективны в ингибировании функции тромбоцитов [18]. С другой стороны, антитромбоцитарная активность пищевых волокон была неопределенной [27, 28]. Итак, мы предположили, что мощная и многоцелевая антитромбоцитарная активность PF может быть связана с гидролизованными танинами, основными фенолами, обнаруженными в этом органе.

PP и PJ проявляли ингибирующее действие как на АДФ, так и на индуцированную коллагеном агрегацию тромбоцитов. Однако для обоих экстрактов не было показано никакого эффекта при использовании АК в качестве агониста. Наши результаты не подтверждают данные Mattiello et al., 2009, которые показали, что оба экстракта ингибируют реакцию тромбоцитов на АК [18]. Сравнение значений ЕС50 показало, что ПП снижал АДФ и агрегацию тромбоцитов, индуцированную коллагеном, более эффективно, чем ФД.

Разницу в ингибирующем действии обоих экстрактов можно объяснить разницей в антиоксидантной способности. В этом исследовании PP был более мощным антиоксидантом, чем PJ, против радикала ABTS и перекисного окисления липидов, а также против радикала DPPH и восстановительной способности [23]. Это объяснение не согласовывалось с некоторыми предыдущими сообщениями, в которых предполагалось, что антиагрегантный потенциал фруктов не связан или противоположен их антиоксидантной активности [29, 30]. PL и PSO были способны ингибировать агрегацию тромбоцитов, запускаемую только АДФ, тогда как они не были эффективны, когда коллаген и АК использовались в качестве агонистов.

Заключение

В заключение следует отметить, что цветки, листья и кожура граната in vitro ингибируют гликирование белков и агрегацию тромбоцитов. Эти эффекты были приписаны антиоксидантным свойствам нескольких активных соединений граната. Однако необходимы дальнейшие исследования, чтобы подтвердить эти результаты и получить более глубокое понимание механизма его действия, прежде чем он будет предложен в качестве естественного ингибитора AGE. Антиоксидантное свойство? Активные соединения в гранате потенциально способствуют этим свойствам.

Сокращения

АК: арахидоновая кислота; AAPH: 2,2'-азобис(2-метилпропионамидин)дигидрохлорид; ABTS: 2,2'-казино-бис(3-этилбензотиазолин-6-сульфоновая кислота; АДФ: аденозиндифосфат (АДФ); AGEs: конечные продукты усиленного гликозилирования; БСА: бычий сывороточный альбумин; ДМСО: диметилсульфоксид ; FeCl2: хлорид железа; HCl: соляная кислота; HFD: диета с высоким содержанием жиров и фруктозы; K2S2O8: раствор персульфата калия; LA: линолевая кислота; MeOH: метанол; NaN3: азид натрия; NH4SCN: тиоцианат аммония; PEG: полиэтиленгликоль; PRP : богатая тромбоцитами плазма; PPP: бедная тромбоцитами плазма.

Благодарности

Заявление о руководящих принципах для растений

Подлинность сорта была подтверждена систематиком д-ром Фатен Зауай из Департамента садоводства Высшего агрономического института Шотт-Мерем (Университет Суса, Тунис), а ваучерный образец был депонирован в нашей национальной коллекции, хранящейся в двух экземплярах в Габесе и Шот-Мариеме. (Сус), с кодом «TN1, TN2, TN3, TN5, TN5». Исследование соответствует соответствующим институциональным, национальным и международным руководствам и законодательству, и разрешение на сбор Punica granatum L. было получено от Регионального исследовательского центра по Садоводство и органика Шотт-Марием, IRESA-Университет Сусса, 8.P.57-4042, Тунис.

Вклад авторов

ЗА и ИА; методология, ZA; и ИА; программное обеспечение, AZ и RC; проверка, ресурсы, ZA; написание — подготовка первоначального проекта, JG; надзор, MH и SH; написание - обзор и редактирование. Все авторы прочитали и согласились с опубликованной версией рукописи.

Финансирование

Эта работа финансировалась Министерством высшего образования и научных исследований Туниса.

Наличие данных и материалов

Наборы данных, созданные во время и/или проанализированные в ходе текущего исследования, доступны у соответствующего автора по обоснованному запросу.

Декларации

Этическое одобрение и согласие на участие

Это исследование было одобрено локальным комитетом по этике университетской больницы Hedi Chaker в Сфаксе, Тунис. Все эксперименты проводились по соответствующим руководствам и правилам. Информированное согласие было получено от всех субъектов и/или их законных опекунов.

Согласие на публикацию

Непригодный.

Конкурирующие интересы

Авторы заявляют никакого конфликта интересов.

Сведения об авторе

1 Лаборатория биохимии, LR12ES05 «Питание – функциональные продукты и здоровье сосудов», медицинский факультет Университета Монастира, 5019 Монастир, Тунис. 2 Центр переливания крови Sanguine de Sfax, Route El-Ain Km 0,5, CP 3003 Sfax, Тунис.

Рекомендации

1. Ханафи С.М., Абд Эль-Шафи Ю.М., Салех В.Д., Фати Х.М. Химическое профилирование, антимикробная и антиоксидантная активность in vitro экстрактов кожуры граната, апельсина и банана в отношении патогенных микроорганизмов. J Genet Eng Biotechnol. 2021;19:80.

2. Бенчагра Л., Берруги Х., Ислам М.О., Рамчоун М., Бульбаруд С., Хаджаджи А. и др. Антиоксидантное действие экстрактов марокканского граната (сорт Punica granatum L. Sefri), богатых пуникалагином, против процесса окислительного стресса. Еда. 2021;10:2219.

3. Акуру Э.А., Чуквума С.И., Ойеагу С.Э., Эрукаинуре О.Л., Машиле Б., Сетлходи Р. и соавт. Пищевой и фитохимический профиль кожуры граната («чудесный сорт») и ее влияние на окислительный стресс в печени и метаболические изменения. Дж Фуд Биохим. 2022:46.

4. Гил М.И., Томас-Барберан Ф.А., Хесс-Пирс Б., Холкрофт Д.М., Кадер А.А. Антиоксидантная активность гранатового сока и ее связь с фенольным составом и обработкой. J Agric Food Chem. 2000;48:4581–9.

5. Розенблат М., Хайек Т., Авирам М. Антиоксидантные эффекты потребления гранатового сока (ПГ) больными диабетом на сыворотку и макрофаги. Атеросклероз. 2006; 187: 363–71.

6. Амри З., Бен Хедер М.Р., Заиби М.С., Харруби В., Турки М., Аяди Ф. и др. Противодиабетические эффекты экстрактов граната у крыс, длительное время получавших жир с высоким содержанием фруктозы. Клин Фитофизика. 2020;6:55.

7. Harzallah A, Hammami M, Kępczyńska MA, Hislop DC, Arch JRS, Cawthorne MA, et al. Сравнение потенциальных профилактических эффектов масла цветков, кожуры и семян граната на резистентность к инсулину и воспаление в модели ожирения у мышей, вызванной диетой с высоким содержанием жиров и сахарозы. Арх Физиол Биохим. 2016; 122:75–87.

8. Аль-Муаммар М.Н., Хан Ф. Ожирение: профилактическая роль граната (Punica granatum). Питание. 2012; 28: 595–604.

9. Amri Z, Kharroubi W, Fidanzi-Dugas C, Leger DY, Hammami M, Liagre B. Ингибирующие рост и проапоптотические эффекты экстрактов декоративного граната в клетках рака предстательной железы человека Du145. Нутр Рак. 2020; 72: 932–8.

10. Арлотта С., Апулия Г.Д., Дженовезе С., Тоскано В., Карлова Р., Биквилдер Дж. и соавт. MYB5-like и bHLH влияют на состав флавоноидов в гранате. Растениевод. 2020;298:110563.

11. Амри З., Горбель А., Турки М., Акрут Ф.М., Аяди Ф., Эльфеки А. и др. Влияние экстрактов граната на антиоксидантные маркеры мозга и активность холинэстеразы при ожирении, вызванном диетой с высоким содержанием жиров и фруктозы, на модели крыс. BMC Комплемент Altern Med. 2017;17:339.

12. Окура Т., Уэта Э., Накамура Р., Фудзиока Ю., Суми К., Мацумото К. и др. Высокий уровень конечных продуктов гликирования в сыворотке связан со снижением секреции инсулина у пациентов с диабетом 2 типа: краткий отчет. J Диабет Res. 2017;2017.

13. Аль-Софани М.Э., Янек Л.Р., Фарадей Н., Крал Б.Г., Матиас Р., Беккер Л.С. и соавт. Диабет и реакция тромбоцитов на низкие дозы аспирина. J Clin Endocrinol Metab. 2018;103:4599–608.

14. Макьюэн Б.Дж. Влияние диеты и нутриентов на функцию тромбоцитов. Семин Тромб Гемост. 2014;40:214–26.

15. Lim ST, Coughlan CA, Murphy SJX, Fernandez-Cadenas I, Montaner J, Thijs V, et al. Тестирование функции тромбоцитов при транзиторной ишемической атаке и ишемическом инсульте: всесторонний систематический обзор литературы. Тромбоциты. 2015; 26: 402–12.

16. Дхананджаян К., Форбс Дж., Мюнх Г. Продвинутая гликация, диабет и деменция. В: Диабет 2 типа и слабоумие; 2018. с. 169–93.

17. Кумагай Ю., Накатани С., Онодера Х., Нагатомо А., Нисида Н., Мацуура Ю. и др. Антигликационное действие экстракта плодов граната (Punica granatum L.) и его компонентов in vivo и in vitro. J Agric Food Chem. 2015;63:7760–4.

18. Маттьелло Т., Трифро Э., Джотти Г.С., Пульчинелли FM. Влияние гранатового сока и полифенолов экстракта на функцию тромбоцитов. Джей Мед Фуд. 2009; 12: 334–9.

19. Дельгадо-Андраде К., Моралес Ф.Дж. Раскрытие вклада меланоидинов в антиоксидантную активность кофейных напитков. J Agric Food Chem. 2005; 53:1403–7.

20. Ольшевская М.А., Преслер А., Мишель П. Профилирование фенольных соединений и антиоксидантной активности сухих экстрактов из выбранных видов рябины. Молекулы. 2012;17:3093–113.

21. Серо Л., Сангине Л., Бланшар П., Данг Б.Т., Морель С., Ришом П. и др. Настройка флуоресцентного анализа в 96-луночном титрационном микропланшете для выявления ингибиторов КПГ в неочищенных растительных экстрактах. Молекулы. 2013;18:14320–39.

22. Piluzza G, Bullitta S. Взаимосвязь между содержанием фенолов и антиоксидантными свойствами в 24 видах растений традиционного этноветеринарного использования в Средиземноморье. Фарм Биол. 2011;49:240–7.

23. Амри З., Зауай Ф., Лазрег-Ареф Х., Солтана Х., Мнери А., Марс М. и др. Фитохимический состав, состав жирных кислот и антиоксидантный потенциал различных частей граната: сравнение съедобных и несъедобных сортов, выращенных в Тунисе. Int J Биол Макромоль. 2017; 104: 274–80.

24. Sohrab G, Angoorani P, Tohidi M, Tabibi H, Kimiagar M, Nasrollahzadeh J. Сок граната (Punicagranatum) снижает перекисное окисление липидов, но не влияет на конечные продукты гликирования в плазме у взрослых с диабетом 2 типа: рандомизированное двойное исследование. слепое клиническое исследование. Еда. Нутр Рез. 2015:59.

25. Лю В., Ма Х., Фрост Л., Юань Т., Дейн Дж. А., Сирам Н.П. Фенольные смолы граната ингибируют образование конечных продуктов гликирования путем удаления активных карбонильных частиц. Функц. питания 2014;5:2996–3004.

26. Авирам М., Волкова Н., Коулман Р., Дреер М., Редди М.К., Феррейра Д. и соавт. Фенольные смолы граната из кожуры, кожуры и цветков обладают антиатерогенным действием: исследования in vivo на мышах с дефицитом аполипопротеина E (E 0) и in vitro на культивируемых макрофагах и липопротеинах. Журнал сельскохозяйственной и пищевой химии. 2008; 56:1148–57.

27. Ханнан Дж.М.А., Рокея Б., Фарук О., Нахар Н., Мосихуззаман М., Азад Хан А.К. и др. Влияние фракции растворимых пищевых волокон Trigonella foenum graecum на гликемический, инсулинемический, липидемический статус и статус агрегации тромбоцитов у крыс с модельным диабетом 2 типа. J Этнофармакол. 2003; 88: 73–7.

28. Баггер М., Андерсен О., Нильсен Дж. Б., Риттиг К. Р. Пищевые волокна снижают артериальное давление, уровень общего холестерина в сыворотке крови и агрегацию тромбоцитов у крыс. Бр Дж Нутр. 1996; 75: 483–93.

29. Датта-Рой А.К., Гордон М.Дж., Келли С., Хантер К., Кросби Л., Найт-Карпентар Т. и др. Ингибирующее действие экстрактов гинкго двулопастного на агрегацию тромбоцитов человека. Тромбоциты. 1999; 10: 298–305.

30. Датта-Рой А.К., Кросби Л., Гордон М.Дж. Влияние экстракта помидоров на агрегацию тромбоцитов человека in vitro. Тромбоциты. 2001; 12: 218–27.

Примечание издателя 

Springer Nature остается нейтральной в отношении юрисдикционных претензий в опубликованных картах и ​​институциональной принадлежности.

【Для получения дополнительной информации: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】