5.2. Анализ эфирного масла

Выделение эфирных масел методом гидродистилляции проводили в аппарате типа Клевенджера в течение 3 ч [64].

Гликозид цистанхе также может повышать активность СОД в тканях сердца и печени и значительно снижать содержание липофусцина и МДА в каждой ткани, эффективно удаляя различные активные кислородные радикалы (ОН-, Н₂О₂ и др.) и защищая от повреждения ДНК, вызванного ОН-радикалами. Цистанхефенилэтаноидные гликозиды обладают сильной акцепторной способностью свободных радикалов, более высокой восстановительной способностью, чем витамин С, улучшают активность СОД в суспензии сперматозоидов, снижают содержание МДА и оказывают определенное защитное действие на функцию мембран сперматозоидов. Полисахариды цистанхе могут усиливать активность СОД и GSH-Px в эритроцитах и ​​тканях легких экспериментально стареющих мышей, вызванную D-галактозой, а также снижать содержание МДА и коллагена в легких и плазме, повышать содержание эластина, хороший очищающий эффект на DPPH, продлевает время гипоксии у стареющих мышей, улучшает активность SOD в сыворотке и задерживает физиологическую дегенерацию легких у экспериментально стареющих мышей Эксперименты с клеточной морфологической дегенерацией показали, что Cistanche обладает хорошей антиоксидантной способностью и потенциально может стать лекарством для профилактики и лечения заболеваний кожи, вызывающих старение. В то же время эхинакозид в цистанхе обладает значительной способностью улавливать свободные радикалы DPPH и может улавливать активные формы кислорода, предотвращать вызванную свободными радикалами деградацию коллагена, а также оказывает хорошее восстанавливающее действие на повреждение анионов свободных радикалов тимина.

Нажмите на добавку Cistanche Tubulosa.

【Для получения дополнительной информации: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Анализы масел проводились как газовой хроматографией (ГХ), так и газовой хроматографией/масс-спектрометрией (ГХ/МС). Анализы ГХ выполняли с использованием газового хроматографа (Agilent 7890A, Пало-Альто, Калифорния, США), оснащенного 30 м × 0,25 мм внутренним диаметром с 0,25 мкм неподвижной толщина пленки Капиллярная колонка HP-5 (Agilent J&W, Санта-Клара, Калифорния, США). Использовалась следующая температурная программа: от 60 ◦С до 246 ◦С со скоростью 3 ◦С мин–1 и затем выдержка при 246 ◦С в течение 20 мин (общее время анализа 82 мин). Другими рабочими условиями были следующие: газ-носитель гелий (чистота выше или равна 99,9999% — Air Liquide, Милан, Италия); скорость потока 1,0 мл.мин-1; температура инжектора 250 ◦С; температура детектора 300 ◦C. Ввод 1 мкл разбавленного образца (1:100 в н-гексане, масс./масс.) выполняли с коэффициентом деления 1:20 с использованием автоматического пробоотборника (Agilent, модель 7683B, Санта-Клара, Калифорния, США).

Анализ ГХ-МС проводили с использованием газового хроматографа (Agilent 6890N, Санта-Клара, Калифорния, США), оснащенного 30 м x 0,25 мм внутренним диаметром с толщиной стационарной пленки 0,25 мкм HP{ {7}}капиллярная колонка ms (Agilent J&W, Санта-Клара, Калифорния, США) в сочетании с масс-селективным детектором с устройством электронной ионизации, ЭУ и квадрупольным анализатором (Agilent 5973, Санта-Клара, Калифорния, США). Температурная программа и рабочие условия хроматографии (за исключением детектора) были такими же, как и для ГХ-ПИД. Условия МС были следующими: температура линии передачи МС 240 ◦C; температура источника ионов ЭУ 200 ◦С с энергией ионизации 70 эВ; температура квадруполя 150 ◦C; скорость сканирования, 3,2 сканирования/с в диапазоне сканирования m/z (от 30 до 480). Для обработки и обработки хроматограмм и масс-спектров использовали программное обеспечение MSD ChemStation (Agilent, rev. E.01.00.237, Санта-Клара, Калифорния, США). Соединения идентифицировали путем сравнения их масс-спектров с данными библиотеки NIST02 системы ГХ/МС и библиотек Адамса [32,33]. Результаты были дополнительно подтверждены сравнением порядка элюирования соединений с их индексами удерживания на семиполярных фазах, указанными в литературе [32]. Индексы удерживания компонентов определяли относительно времен удерживания ряда н-алканов (две стандартные смеси С8-С20 и С21-С40) с линейной интерполяцией [65]. Процент отдельных компонентов рассчитывали на основе площадей пиков ГХ без коррекции коэффициента отклика ПИД. Результаты представлены в виде процента отдельных пиков ± стандартное отклонение двух независимых хроматографических циклов.

5.3. Противогрибковая активность

Противогрибковую активность эфирного масла S. cacaliifolia оценивали в отношении мицелиальных грибов и дрожжей. Три клинических штамма дерматофитов, выделенных из ногтей и кожи (Epidermophyton floccosum FF9, Trichophyton mentagrophytes FF7 и Microsporum canis FF1), и четыре штамма типа дерматофитов из Colección Espanõla de Cultivos Tipo (T. mentagrophytes var. interdigital CECT 2958, T. rubrum CECT 2794, T. verrucosum CECT 2992 и M. gypseum CECT 2908), один штамм типа Cryptococcus neoformans (C. neoformans YPO186), два клинических штамма Candida, выделенных из рецидивирующих случаев вульвовагинита (C. krusei LF33, C. guillermondii MAT23) и три штамма типа Candida (C. albicans ATCC 10231, C. tropicalis YPO128 и C. paraphimosis ATCC 90018). Все штаммы хранились в декстрозном бульоне Сабуро с 20-процентным содержанием глицерина при температуре -80 ◦C и пересевались в декстрозный агар Сабуро (SDA) или картофельно-декстрозный агар (PDA) перед каждым тестом, чтобы обеспечить оптимальные условия роста и чистоту.

Для определения минимальной ингибирующей концентрации (МИК) и минимальной летальной концентрации (МЛК) масла использовали метод микроразведений в бульоне в соответствии со справочным протоколом Института клинических и лабораторных стандартов (CLSI) M38-A2 [66] или M27-A3 [67] для мицелиальных грибов и дрожжей соответственно. МИК была самой низкой концентрацией, при которой не наблюдалось роста в инокулированных пробирках, тогда как MLC была самой низкой концентрацией, при которой не наблюдалось роста после инокуляции в SDA всех отрицательных пробирок. Также включали отрицательный (незасеянная среда) и положительный (засеянная среда с 1% ДМСО) контроль.

5.4. Противовоспалительная активность

RAW 264.7, клеточную линию мышиных лейкозных макрофагов, полученную из Американской коллекции типовых культур (ATCC TIB-71), культивировали, как сообщалось ранее нашей группой [22].

Продукцию NO измеряли путем количественного определения накопления нитритов в культуральных супернатантах с использованием реактива Грисса [68]. Клетки (0.6 × 106 клеток/лунку) культивировали в культуральных планшетах с 48-лунками. После ночной стабилизации макрофаги предварительно обрабатывали в течение 1 ч эфирным маслом (0.08–1,25 мкл/мл), разведенным в ДМСО, а затем активировали 50 нг/мл ЛПС для 24 ч. Были проведены положительные (стимулированные ЛПС макрофаги) и отрицательные контроли (необработанные макрофаги). После этого периода инкубации равные объемы культуральных супернатантов и реактива Грисса [1:1 0,1% (вес/объем) N-(1-нафтил)этилендиаминдигидрохлорида и 1 процент (вес/объем) сульфаниламида, содержащего 5 процентов ( w/v) H3PO4] смешивали и инкубировали в течение 30 мин в темноте. Поглощение при 550 нм регистрировали в автоматическом планшет-ридере (Agilent, Санта-Клара, Калифорния, США), а концентрацию нитрита определяли по стандартной кривой нитрита натрия. Наша группа уже продемонстрировала, что ДМСО в максимальной используемой концентрации (0,4%) не оказывает противовоспалительного и цитотоксического действия (данные не показаны).

RAW 264.7 (1,2 × 106 клеток/лунку) культивировали в 6-луночных планшетах и ​​оставляли для стабилизации на 12 часов. Затем клетки инкубировали с эфирным маслом (0,64 мкл/мл) в течение 1 часа с последующей активацией ЛПС (50 нг/мл) в течение 24 часов. Рассматривали отрицательный контроль (необработанные клетки) и положительный контроль (клетки, обработанные только ЛПС). Клеточные лизаты готовили, как описано ранее Zuzarte et al. [22].

Вестерн-блоттинг был проведен для измерения уровней белка индуцибельной синтазы оксида азота (iNOS) и циклооксигеназы {{0}} (COX-2). Белки разделяли электрофорезом на SDS-полиакриламиде 10% (об./об.) при 130 В в течение 1,5 ч и переносили на поливинилиденфторидные мембраны (предварительно активированные метанолом) при 400 мА в течение 3 ч. После блокирования неспецифических IgG 5-процентным (масс./об.) молоком в TBS-T в течение 1 ч при комнатной температуре мембраны инкубировали со специфическими антителами против iNOS (1:500; R&D Systems) или ЦОГ{{15} } (1:5000; Abcam, Кембридж, Великобритания) в течение ночи при 4 ◦C. Затем мембраны промывали в течение 30 мин TBS-T (10 мин, 3 раза) и инкубировали при комнатной температуре в течение 1 ч со вторичными антителами (1:40,000; Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX). , США), конъюгированный с пероксидазой хрена. Иммунокомплексы выявляли с помощью хемилюминесцентного сканера (Image Quant LAS 500, GE, Бостон, Массачусетс, США). Мембраны исследовали с помощью антитела против тубулина (1:20 000; Sigma), чтобы гарантировать загрузку эквивалентного количества белка. Количественную оценку белка проводили с использованием ImageLab версии 6.1.0 (Bio-Rad Laboratories Inc., Геркулес, Калифорния, США).

5.5. Миграция ячеек

NIH 3T3, клеточную линию эмбриональных фибробластов мыши (ATCC CRL-1658), культивировали, как описано ранее в нашей группе [69].

5.5.2. Анализ миграции клеток

Миграция клеток проводилась с использованием анализа царапин и ран, как сообщалось Мартинотти и его коллегами [70] с небольшими модификациями. Вкратце, фибробласты NIH 3T3 высевали в количестве 2,5 × 105 клеток/мл в 12-луночные планшеты. Через 24 ч роста на монослое клеток делали царапину с помощью наконечника пипетки на 20–200 мкл. Отслоившиеся клетки удаляли промыванием клеток стерильным PBS 1x. Во все чашки добавляли DMEM с 2% сыворотки в присутствии или в отсутствие эфирного масла. С помощью фазово-контрактного микроскопа были получены изображения через 0, 12 и 18 часов после царапины, а площадь раны была измерена с использованием программного обеспечения ImageJ/Fiji. Представленные результаты были получены с использованием следующего уравнения

5.6. Жизнеспособность клеток

Влияние различных концентраций эфирного масла на жизнеспособность как макрофагов, так и фибробластов определяли с помощью анализа восстановления резазурина. Вкратце, макрофаги ({{0}},6 × 106 клеток/мл) или фибробласты (1,25 × 105 клеток/мл) высевали в 48-луночные планшеты. После стабилизации в течение ночи добавляли различные концентрации эфирного масла (0,08–1,25 мкл/мл), разведенного в ДМСО, на 24 часа. В конце эксперимента среду удаляли и добавляли свежую среду, содержащую резазурин (1:10), на 1 ч или 4 ч для макрофагов и фибробластов соответственно. Поглощение при 570 нм с эталонным фильтром 620 нм регистрировали в автоматическом планшет-ридере (Agilent, Санта-Клара, Калифорния, США). Жизнеспособность клеток определяли с использованием следующего уравнения:

где AbsExp — поглощение (разница между 570 и 620 нм) в различных экспериментальных условиях, а AbsCT — поглощение в контрольных клетках (без эфирного масла).

5.7. Индуцированное этопозидом старение 

Старение оценивали с использованием имеющегося в продаже набора для окрашивания бета-галактозидазой в соответствии с протоколом производителя (Cell Signaling Technology). Вкратце, 2,5 × 104 фибробластов высевали в 12-луночные планшеты и оставляли для прилипания в течение ночи. Затем индуцировали старение путем инкубации клеток с 12,5 мкМ этопозида в течение 24 часов. Этопозид удаляли и клетки промывали PBS 1x. Затем клеткам давали возможность восстановиться в течение 72 ч в среде DMEM в отсутствие или в присутствии эфирного масла S. cacaliifolia, и ежедневно оценивали изменения в морфологии. Через 72 часа клетки фиксировали в течение 15 минут с использованием 1x фиксирующего раствора (предоставляется в коммерческом наборе), затем промывали PBS и инкубировали в течение ночи с окрашивающим раствором бета-галактозидазы в сухом инкубаторе при 37 ◦ C без подачи CO2. Различные поля просматривали под микроскопом на предмет развития синего цвета и фотографировали для анализа изображения (8 изображений в каждом состоянии). Отчетливое синее окрашивание указывало на активность бета-галактозидазы. Количественный анализ проводили с использованием ImageJ, и рассчитывали процентное соотношение стареющих клеток к общему количеству клеток.

5.8. Статистический анализ

Результаты представлены в виде средних значений ± SEM (стандартная ошибка среднего) по крайней мере из трех независимых экспериментов, проведенных в двух повторностях. Статистическую значимость для анализа противовоспалительного действия, жизнеспособности клеток и старения определяли с помощью однофакторного дисперсионного анализа (ANOVA) с последующим апостериорным тестом Даннета с использованием GraphPad Prism версии 9.3.0 (GraphPad Software, San Diego, Калифорния, США). Для анализов миграции клеток статистическую значимость определяли с помощью двустороннего дисперсионного анализа с последующим тестом множественных сравнений Сидака. Считалось, что р-значение < 0.05 представляет значительные различия.

Вклад автора:Концептуализация, LS и AM; проверка, AS, MJG, MTC и SP; формальный анализ, JMA-S., MJG, AP и DF; расследование, JMA-S., AM и AP; ресурсы, AM, EC, MTC и LS; курирование данных, AP; написание — подготовка первоначального проекта, JMA-S., AP и AM; написание - обзор и редактирование, MTC, LS и AM; визуализация, JMA-S.; надзор, LS и AM; администрирование проекта, LS; приобретение финансирования, LS и MTC Все авторы прочитали и согласились с опубликованной версией рукописи.

Финансирование:Эта работа финансировалась COMPETE 2020 — Оперативной программой повышения конкурентоспособности и интернационализации и национальными фондами Португалии через FCT — Fundação para a Ciência ea Tecnologia в рамках проектов UIDB/04539/2020, UIDP/04539/2020 и LA/P/0058/2020.

Заявление о доступности данных:Данные будут доступны по запросу.

Конфликт интересов:Авторы объявили, что нет никаких конфликтов интересов.

Рекомендации

1. Бонгомин Ф.; Гаго, С .; Оладеле Р.; Деннинг, Д. Глобальная и многонациональная распространенность грибковых заболеваний — точность оценки. J. Fungi 2017, 3, 57. [CrossRef] [PubMed]

2. Кампой, С.; Адрио, Дж.Л. Противогрибковые препараты. Биохим. фарм. 2017, 133, 86–96. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

3. Гупта, А.К.; Cooper, EA Обновление противогрибковой терапии дерматофитоза. Микопатология 2008, 166, 353–367. [Перекрестная ссылка]

4. Матиз, К.; Friedlander, SF Инфекции подкожных тканей и абсцессы. В принципах и практике детских инфекционных заболеваний; Elsevier: Амстердам, Нидерланды, 2012 г.; стр. 454–462.e3.

5. де Оливейра, CB; Васконселлос, К.; Сакаи-Валенте, Нью-Йорк; Сотто, Миннесота; Луис, ФГ; Бельда Джуниор, В .; де Соуза, MdGT; Бенард, Г.; Criado, PR Toll-подобные рецепторы (TLR) 2 и 4. Экспрессия кератиноцитов у пациентов с локализованной и диссеминированной дерматофитией. Преподобный Инст. Мед. Троп. Сан-Паулу, 2015 г., стр. 57, 57–61. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

6. Селестрино, Джорджия; Рейс, АПК; Криадо, PR; Бенард, Г.; Sousa, MGT Trichophyton Rubrum вызывает фагоцитарную и провоспалительную реакцию в моноцитах человека через Toll-подобный рецептор 2. Front. микробиол. 2019, 10, 2589. [Перекрестная ссылка]

7. Вс, С.-К. Неканонический путь NF-B в иммунитете и воспалении. Нац. Преподобный Иммунол. 2017, 17, 545–558. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

8. Шарма, А.; Гупта, С. Защитное проявление гербонаноцевтиков как противогрибковых средств: возможный кандидат в лекарства от дерматофитной инфекции. наук о здоровье. Отчет 2022, 5. [CrossRef]

9. Го, С.; DiPietro, LA Факторы, влияющие на заживление ран. Дж. Дент. Рез. 2010, 89, 219–229. [Перекрестная ссылка]

10. Зузарте, М.; Гонсалвеш, MJ; Кавалейро, К.; Канхото, Дж.; Вале-Сильва, Л.; Сильва, МДж; Пинто, Э .; Salgueiro, L. Химический состав и противогрибковая активность эфирных масел Lavandula Viridis LHér. Дж. Мед. микробиол. 2011, 60, 612–618. [Перекрестная ссылка]

11. Мартинес-Росси, Н.М.; Битенкур, Т.А.; Перес, НТА; Ланг, EAS; Гомеш, Э.В.; Куаремин, Н.Р.; Мартинс, член парламента; Лопес, Л.; Росси, А. Резистентность дерматофитов к противогрибковым препаратам: механизмы и перспективы. Передний. микробиол. 2018, 9, 1108. [Перекрестная ссылка]

12. Мурад, А.; Perfect, JR Война с криптококкозом: обзор противогрибкового арсенала. Мем. Инст. Освальдо. Круз. 2018, 113, e170391. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

13. Маккарти, М.В.; Контояннис, Д.П.; Корнели, О.А.; Совершенный, младший; Уолш, Т. Дж. Новые агенты и лекарственные мишени для решения проблем, связанных с резистентными грибами. Дж. Заразить. Дис. 2017, 216, С474–С483. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

14. Фонкеман, Х.Е.; ван де Лаар, MAFJ Нестероидные противовоспалительные препараты: побочные эффекты и их предотвращение. Семин. Артрит. Реум. 2010, 39, 294–312. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

15. Баккали Ф.; Авербек, С.; Авербек, Д.; Идаомар, М. Биологическое действие эфирных масел. Обзор. Пищевая хим. Токсикол. 2008, 46, 446–475. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

16. Кристаки, Э.; Бонос, Э.; Джанненас, И.; Флороу-Панери, П. Ароматические растения как источник биоактивных соединений. Сельское хозяйство 2012, 2, 228–243. [Перекрестная ссылка]

17. Эдрис А.Э. Фармацевтические и терапевтические возможности эфирных масел и их летучих компонентов: обзор. Фитотер. Рез. 2007, 21, 308–323. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

18. Пинто, Э.; Вале-Сильва, Л.; Кавалейро, К.; Salgueiro, L. Противогрибковая активность эфирного масла гвоздики из Syzygium Aromaticum в отношении видов Candida, Aspergillus и Dermatophyte. Дж. Мед. микробиол. 2009, 58, 1454–1462. [Перекрестная ссылка]

19. Пинто, Э.; Хримпенг, К.; Лопес, Г.; Ваз, С .; Гонсалвеш, MJ; Кавалейро, К.; Salgueiro, L. Противогрибковая активность эфирного масла Ferulago Capillaris против видов Candida, Cryptococcus, Aspergillus и Dermatophyte. Евро. Дж. Клин. микробиол. Заразить. Дис. 2013, 32, 1311–1320. [Перекрестная ссылка]

20. Пинто, Э.; Пина-Ваз, К.; Салгейро, Л.; Гонсалвеш, MJ; Коста-де-Оливейра, С.; Кавалейро, К.; Палмейра, А .; Ро-Дригес, А .; Мартинезде-Оливейра, Дж. Противогрибковая активность эфирного масла Thymus Pulegioides в отношении видов Candida, Aspergillus и Dermatophyte. Дж. Мед. микробиол. 2006, 55, 1367–1373. [Перекрестная ссылка]

21. Валенте, Дж.; Зузарте, М .; Гонсалвеш, MJ; Лопес, MC; Кавалейро, К.; Салгейро, Л.; Круз, М.Т. Противогрибковая, антиоксидантная и противовоспалительная активность эфирного масла Oenanthe Crocata L.. Пищевая хим. Токсикол. 2013, 62, 349–354. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

22. Зузарте, М.; Алвес-Сильва, Дж. М.; Алвес, М.; Кавалейро, К.; Салгейро, Л.; Круз, М.Т. Новое понимание противовоспалительного потенциала и профиля безопасности эфирных масел Thymus carnosus и Thymus Camphoratus и их основных соединений. Ж. Этнофармакол. 2018, 225, 10–17. [Перекрестная ссылка]

23. Уокер, Дж. Б.; Сытсма, К.Дж.; Трейтлейн, Дж.; Винк, М. Шалфей (Lamiaceae) не является монофилетическим: последствия для систематики, радиации и экологических специализаций шалфея и трибы Mentheae. Являюсь. Дж. Бот. 2004, 91, 1115–1125. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

24. Су, С.-Ю.; Мин, К.-Л.; Рахман, К.; Хан, Т .; Цинь, Л.-П. Salvia Miltiorrhiza: традиционное лекарственное использование, химия и фармакология. Подбородок. Дж. Нат. Мед. 2015, 13, 163–182. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

25. Горбани, А.; Эсмаилизаде М. Фармакологические свойства шалфея лекарственного и его компонентов. Дж. Традит. Дополнение. Мед. 2017, 7, 433–440. [Перекрестная ссылка]

26. Афонсу, А.Ф.; Алвес-Сильва, Дж. М.; Перейра, Орегон; Кардосо, С.М. Благотворное влияние растений шалфея: корреляция с биологически активными компонентами. Последние достижения в области лекарственных растений, том 44: фитотерапия III; Говил, Дж. Н., Патхак, М., ред.; Studium Press: Нью-Дели, Индия, 2016; стр. 161–198.

27. Салимикия, И.; Арианпур, М .; Абдоллахи, М.; Абдолгаффари, А .; Самади, Н.; Monsef-Esfahani, H. Фитохимические и ранозаживляющие эффекты метанольного экстракта Salvia Multicaulis Vahl. в Крысе. Планта Мед. 2016, 81, С1–С381. [Перекрестная ссылка]

28. Гали-Мухтасиб, Х.; Хилан, К.; Khater, C. Традиционное использование Salvia Libanotica (шалфей восточно-средиземноморского) и действие его эфирных масел. Ж. Этнофармакол. 2000, 71, 513–520. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

29. Хамидпур, М.; Хамидпур, Р .; Хамидпур, С .; Шахлари, М. Химия, фармакология и лекарственные свойства шалфея (шалфея) для предотвращения и лечения таких заболеваний, как ожирение, диабет, депрессия, деменция, волчанка, аутизм, болезни сердца и рак. Дж. Традит. Дополнение. Мед. 2014, 4, 82–88. [Перекрестная ссылка]

30. Аскари, С.Ф.; Аван, Р .; Таярани-Наджаран, З.; Сахебкар, А .; Эгбали, С. Иранские виды шалфея: фитохимическое и фармакологическое обновление. Фитохимия 2021, 183, 112619. [CrossRef]

31. Давидсе Г.; Соуза Санчес, М.; Кнапп, SD; Чиан Кабрера, F. Rubiaceae и Verbenaceae. 4(2): I – XVI, 1–533. Во флоре Мезоамериканы; Давидсе, Г., Соуза Санчес, М., Кнапп, С.Д., Чиан Кабрера, Ф., ред.; Ботанический сад Миссури: Сент-Луис, Миссури, США, 2012 г.; стр. 402–403.

32. Адамс, Р.П. Идентификация компонентов эфирного масла с помощью газовой хроматографии/квадрупольной масс-спектроскопии, 4-е изд.; Издательство Allured Publishing Corporation: Кэрол Стрим, Иллинойс, США, 2007 г.

33. Масс-спектральная библиотека NIST/EPA/NIH, 2005 г.

34. Гихарро-Муньос, И.; Компт, М.; Альварес-Сьенфуэгос, А .; Альварес-Валлина, Л.; Санс, Л. Липополисахарид активирует опосредованный Toll-подобным рецептором 4 (TLR4) сигнальный путь NF-KB и провоспалительную реакцию в перицитах человека. Дж. Биол. хим. 2014, 289, 2457–2468. [Перекрестная ссылка]

35. Скрима, М.; Мелито, К.; Мерола, Ф .; Иорио, А .; Вито, Н .; Гиори, AM; Ферраванте, А. Оценка ранозаживляющей активности водно-спиртового экстракта надземной части шалфея Haenkei на экспериментальных моделях in vitro и in vivo. клин. Космет. расследование Дерм. 2020, 13, 627–637. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

36. Фарахпур, М.Р.; Пирхезр Э.; Ашрафян, А .; Сонболи, А. Ускоренное заживление путем местного применения эфирного масла шалфея лекарственного на модели раны, инфицированной синегнойной палочкой и золотистым стафилококком. Биомед. Фармацевт. 2020, 128, 110120. [Перекрестная ссылка]

37. Матич И.; Ревандкар, А .; Чен, Дж.; Бисио, А .; Далл'Аква, С.; Кочетта, В.; Брун, П.; Манчино, Г.; Миланезе, М.; Маттеи, М .; и другие. Идентификация Salvia Haenkei в качестве геродепрессанта с помощью комплексного скринингового анализа Senes-science. Старение 2016, 8, 3223–3240. [Перекрестная ссылка]

38. Парк, Швейцария; Шин, С.Х.; Ли, ЕК; Ким, Д. Х.; Ким, М.-Дж.; Ро, С.-С.; Ёкодзава, Т .; Chung, HY Литоспермат магния B из Salvia Miltiorrhiza BUNGE улучшает вызванное старением воспаление почек и старение за счет образования реактивного кислорода, опосредованного NADPH-оксидазой. Фитотер. Рез. 2017, 31, 721–728. [Перекрестная ссылка]

39. Наджар, Б.; Мекаччи, Г.; Нарди, В.; Червелли, К.; Нардони, С .; Манчианти, Ф .; Эбани, В.В.; Джанеккини, С .; Pistelli, L. Volatiles и противогрибковая, антибактериальная и противовирусная активность южноафриканского Salvia Spp. Эфирные масла, выращенные в одинаковых условиях. Молекулы 2021, 26, 2826. [CrossRef] [PubMed]

40. Абу-Дарвиш, М.С.; Кабрал, К.; Али, З .; Ван, М .; Хан, С.И.; Джейкоб, MR; Джайн, СК; Теквани, Б.Л.; Зульфикар, Ф.; Хан, ИА; и другие. Salvia Ceratophylla L. с юга Иордании: новые взгляды на химический состав и биологическую активность. Нац. Произв. Биопроспект. 2020, 10, 307–316. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

41. Таарит, МБ; Мсаада, К.; Хосни, К.; Чахед, Т .; Марзук, Б. Состав эфирных масел шалфея вербенака, произрастающего в диком виде в Тунисе. Дж. Пищевая биохимия. 2010, 34, 142–151. [Перекрестная ссылка]

42. Вилджоен, А.М.; Гоно-Бвалья, А.; Каматоу, GPP; Ba¸ser, KHC; Демирчи, Б. Состав эфирного масла и хемотаксономия шалфея Stenophylla и его союзников S. Repens и S. Runcinata. Дж. Эссент. Масляный Рез. 2006, 18, 37–45. [Перекрестная ссылка]

43. Пинто, Э.; Салгейро, LR; Кавалейро, К.; Палмейра, А .; Goncalves, MJ In Vitro Восприимчивость некоторых видов дрожжей и мицелиальных грибов к эфирным маслам Salvia Officinalis. инд. урожая. Произв. 2007, 26, 135–141. [Перекрестная ссылка]

44. Тосун, А.; Хан, С .; Ким, Ю .; Калин-Санчес, А .; Хисенай, X .; Карбонелл-Баррачина, А. Состав эфирного масла и противовоспалительная активность шалфея лекарственного L (Lamiaceae) в макрофагах Мурина. Троп. Дж. Фарм. Рез. 2014, 13, 937. [Перекрестная ссылка]

45. Абу-Дарвиш, М.С.; Кабрал, К.; Феррейра, IV; Гонсалвеш, MJ; Кавалейро, К.; Круз, Монтана; Аль-Бдур, TH; Sal-gueiro, L. Эфирное масло шалфея обыкновенного (Salvia Officinalis L.) из Иордании: оценка безопасности в клетках млекопитающих и его противогрибковый и противовоспалительный потенциал. Биомед. Рез. Междунар. 2013, 2013, 1–9. [Перекрестная ссылка]

46. ​​Лепорини, М.; Бонези, М.; Лоиззо, штат Массачусетс; Пассалаква, Н. Г.; Тундис, Р. Эфирное масло шалфея Rosmarinus Spenn. из Италии как источник полезных для здоровья соединений: химический профиль и активность антиоксидантов и ингибиторов холинэстеразы. Растения 2020, 9, 798. [CrossRef]

47. Чой, Дж. К.; О, Х.-М.; Ли, С.; Квон, ТК; Шин, Т.-Ю.; Ро, М.-К.; Ким, С.-Х. Salvia Plebeia подавляет кожные поражения, подобные атопическому дерматиту. Являюсь. Дж. Чин. Мед. 2014, 42, 967–985. [Перекрестная ссылка]

48. Фахед, Л.; Стин, Д .; Уайни, Н.; Эпарвье, В.; Эль Бейрути, М. Химическое разнообразие и антимикробная активность эфирных масел Salvia multicaulis Vahl. хим. Биодайверы. 2016, 13, 591–595. [Перекрестная ссылка]

49. Джулиано, К.; Марчетти, М .; Кампанья, П.; Усаи М. Антимикробная активность и химический состав эфирного масла Helichrysum Microphyllum Cambess. подсп. Tyrrhenicum Bacch., Brullo & Giusso Собраны на юго-западе Сардинии. Саудовская Аравия. Дж. Биол. науч. 2019, 26, 897–905. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

50. Он, X.; Чжан, Л.; Чен, Дж.; Суй, Дж.; Йи, Г .; Ву, Дж.; Ма, Ю. Корреляция между химическим составом и противогрибковой активностью эфирного масла Clausena Lansium против Candida spp. Молекулы 2019, 24, 1394. [CrossRef]

51. Руис-Васкес, Л.; Руис Месия, Л.; Кабальеро Чеферино, HD; Руис Месиа, В.; Андрес, МФ; Диас, CE; Гонса-лес-Колома, А. Противогрибковый и гербицидный потенциал эфирных масел перечной трубы из перуанской Амазонии. Растения 2022, 11, 1793. [CrossRef] [PubMed]

52. Фонтенель, Рос. Мораис, С.М.; Брито, EHS; Бриланте, RSN; Кордейро, РА; Насименто, NRF; Кернтопф, М. Р.; Сидрим, JJC; Роша, MFG Противогрибковая активность эфирных масел видов кротона из бразильского биома Катинга. Дж. Заявл. микробиол. 2008, 104, 1383–1390. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

53. Матела, К.; Джоши С. Антиоксидантная и антибактериальная активность эфирного масла листьев и его составляющих фуранодиенона и курцеренона из Lindera Pulcherrima (Nees.) Benth. Экс Крюк. ф. Фармакогнозия. Рез. 2012, 4, 80. [Перекрестная ссылка]

54. Серра, Э.; Идальго-Бастида, Л.; Верран, Дж.; Уильямс, Д.; Малик, С. Противогрибковая активность коммерческих эфирных масел и биоцидов против Candida Albicans. Патогены 2018, 7, 15. [CrossRef]

55. Бурштейн В.Л.; Беккачече, И.; Гуаскони, Л.; Мена, CJ; Черви, Л.; Чиапелло, Л.С. Иммунитет кожи к дерматофитам: от экспериментальных моделей инфекций до заболеваний человека. Передний. Иммунол. 2020, 11, 605644. [Перекрестная ссылка]

56. Генчик, М.С.; Аксиц, Дж. М.; Живкович Стошиц, MZ; Ранджелович, П.Дж.; Стоянович, Н.М.; Стоянович-Радиц, З.З.; Радулович, Н.С. Связь антимикробного и противовоспалительного действия эфирного масла бессмертника с его химическим составом — взаимодействие между основными и второстепенными составляющими. Пищевая хим. Токсикол. 2021, 158, 112666. [CrossRef] [PubMed]

57. Ачимович, М.; Люич, Дж.; Вулич, Дж.; Желязков В.Д.; Пезо, Л.; Варга, А .; Tumbas Šaponjac, V. Helichrysum Ital-icum (Roth) G. Don Эфирное масло из Сербии: химический состав, классификация и биологическая активность — может ли оно быть подходящей новой культурой для Сербии? Агрономия 2021, 11, 1282. [CrossRef]

58. Аморим, Дж. Л.; Симас, DLR; Пинейро, MMG; Морено, DSA; Альвиано, CS; да Силва, AJR; Диас Фернандес, П. Противовоспалительные свойства и химическая характеристика эфирных масел четырех видов цитрусовых. PLoS ONE 2016, 11, e0153643. [Перекрестная ссылка]

59. Аскари, Дж.; де Оливейра, MS; Нуньес, ДС; Гранато, Д.; Шарф, доктор медицины; Симионатто, Э.; Отуки, М .; Солей, Б.; Хайден Г. Химический состав, антиоксидантная и противовоспалительная активность эфирных масел мужских и женских образцов Baccharis punctulata (Asteraceae). Ж. Этнофармакол. 2019, 234, 1–7. [Перекрестная ссылка]

60. Сингх, П.; Сингх, С .; Капур, ИПС; Сингх, Г.; Исидоров, В.; Щепаняк, Л. Химический состав и антиоксидантная активность эфирного масла и олеорезинов корневищ Curcuma Zedoaria, Часть -74. Пищевые биотехнологии. 2013, 3, 42–48. [Перекрестная ссылка]

61. Йена, С.; Рэй, А .; Банерджи, А .; Саху, А .; Насим, Н .; Саху, С.; Кар, Б.; Патнаик, Дж.; Панда, ПК; Наяк С. Химический состав и антиоксидантная активность эфирного масла из листьев и корневищ Curcuma Angustifolia Roxb. Нац. Произв. Рез. 2017, 31, 2188–2191. [Перекрестная ссылка]

62. Анджик, М.; Божин, Б .; Драгинич, Н.; Кочович, А.; Джеремиц, Дж. Н.; Томович, М.; Милоевич Шаманович, А.; Кладар, Н .; ˇКапо, И.; Яковлевич, В.; и другие. Состав и оценка составов для местного применения на основе эфирного масла Helichrysum Italicum для заживления ран у крыс с диабетом. Pharmaceuticals 2021, 14, 813. [CrossRef]

63. Алина Ф.Н.; Нуграхени, Н .; Салсабила, ИА; Харьянти, С.; Даи, М .; Мейянто, Э. Выявление обратного эффекта экстракта галанги (Alpinia Galanga L.) против окислительного стресса в клетках метастатического рака молочной железы и нормальных клетках фибробластов, предназначенного в качестве сохимиотерапевтического и омолаживающего агента. Азиатский пакет. J. Рак Prev. 2020, 21, 107–117. [Перекрестная ссылка]

64. Совет Европы. Европейская фармакопея, 7-е изд.; Директорат по качеству лекарственных средств и здравоохранения Совета Европы: Страсбург, Франция, 2010 г.; ISBN 978-92-871-6700-2.

65. ван ден Дул, Х.; Крац, П.Д. Обобщение системы индекса удерживания, включая хроматографию газожидкостного распределения с программируемой линейной температурой. Ж. Хроматогр. 1963, 11, 463–471. [Перекрестная ссылка]

66. Институт клинических и лабораторных стандартов. Эталонный метод для тестирования противогрибковой чувствительности мицелиальных грибов в разбавлении бульона; Утвержденный стандарт M38-A2, 2-е изд.; Институт клинических и лабораторных стандартов: Уэйн, Пенсильвания, США, 2008 г.; ISBN 1-56238-668-9.

67. Институт клинических и лабораторных стандартов. Эталонный метод для тестирования противогрибковой чувствительности дрожжей в разбавлении бульона; Утвержденный стандарт M27-A3, 3-е изд.; Институт клинических и лабораторных стандартов: Уэйн, Пенсильвания, США, 2008 г.; ISBN 1-56238-666-2.

68. Грин, Л.С.; Вагнер, Д.А.; Глоговски, Дж.; Шкипер, PL; Вишнок, Дж. С.; Танненбаум, С.Р. Анализ нитратов, нитритов и [15N]нитратов в биологических жидкостях. Анальный. Биохим. 1982, 126, 131–138. [Перекрестная ссылка]

69. Пирас, А.; Макчони, А .; Фальконьери, Д.; Порседа, С.; Гонсалвеш, MJ; Алвес-Сильва, Дж. М.; Сильва, А .; Круз, Монтана; Салгейро, Л.; Maxia, A. Химический состав и биологическая активность эфирного масла Teucrium Scordium L. Subsp. Scordioides (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) с острова Сардиния (Италия). Нац. Произв. Рез. 2021, 36, 5828–5835. [Перекрестная ссылка] [PubMed]

70. Мартинотти, С.; Ранзато, Э. Анализ заживления царапин. В эпидермальных клетках: методы молекулярной биологии; Турксен, К., изд.; Humana: Нью-Йорк, штат Нью-Йорк, США, 2019 г.; Том 2109, стр. 225–229.

Отказ от ответственности/Примечание издателя:Заявления, мнения и данные, содержащиеся во всех публикациях, принадлежат исключительно отдельным авторам и участникам, а не MDPI и/или редакторам. MDPI и/или редактор(ы) отказываются от ответственности за любой ущерб людям или имуществу в результате любых идей, методов, инструкций или продуктов, упомянутых в содержании.